| 中文摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 引言 | 第14-19页 |
| 主要参考文献 | 第16-19页 |
| 材料和方法 | 第19-32页 |
| 1.实验材料 | 第19-23页 |
| 1.1 主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.2 实验仪器 | 第20-21页 |
| 1.3 溶液配制 | 第21-23页 |
| 2.实验方法 | 第23-32页 |
| 2.1 细胞复苏 | 第23-24页 |
| 2.2 细胞传代 | 第24页 |
| 2.3 实验分组 | 第24页 |
| 2.4 Western-blot检测蛋白表达 | 第24-26页 |
| 2.5 实时荧光定量PCR检测mRNA表达 | 第26-28页 |
| 2.6 ELISA检测细胞上清炎症因子含量 | 第28页 |
| 2.7 小鼠原代小胶质细胞培养 | 第28-29页 |
| 2.8 GFP-LC3质粒转染及Atg5蛋白敲减 | 第29-30页 |
| 2.9 吞噬实验 | 第30-31页 |
| 2.10 稳转细胞系的构建 | 第31页 |
| 2.11 统计方法 | 第31-32页 |
| 结果 | 第32-43页 |
| 1.重组α-synuclein蛋白单体抑制小胶质细胞自噬激活 | 第32-33页 |
| 2.过表达野生型α-synuclein PC12细胞上清抑制小胶质细胞自噬 | 第33-34页 |
| 3.α-synuclein抑制小胶质细胞自噬起始 | 第34-36页 |
| 4.AMPK/mTOR通路介导α-synuclein对自噬的抑制作用 | 第36-38页 |
| 5.小胶质细胞自噬调控神经炎症反应 | 第38-40页 |
| 6.小胶质细胞自噬调控细胞吞噬能力 | 第40-43页 |
| 讨论 | 第43-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-61页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文及科研成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
