| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 文献回顾 | 第17-33页 |
| 1 分子影像 | 第17-19页 |
| 1.1 分子影像用于肿瘤的早期诊断 | 第17-18页 |
| 1.2 分子影像在肿瘤治疗中的应用 | 第18-19页 |
| 2 成像模态 | 第19-25页 |
| 2.1 单模态成像 | 第19-21页 |
| 2.2 多模态成像 | 第21页 |
| 2.3 多分子成像 | 第21-24页 |
| 2.3.1 多模态融合多分子靶点成像 | 第22页 |
| 2.3.2 光学多分子成像和多色成像 | 第22-23页 |
| 2.3.3 基于拉曼散射的分子成像 | 第23-24页 |
| 2.4 光学分子成像和近红外荧光成像 | 第24-25页 |
| 3 结合分子影像学方法的内镜技术 | 第25-26页 |
| 4 分子探针设计 | 第26-33页 |
| 4.1 非特异性成像探针 | 第27页 |
| 4.2 特异性成像 | 第27-33页 |
| 4.2.2.1 酶活性探针 | 第29-30页 |
| 4.2.2.2 pH特异性活化探针 | 第30-31页 |
| 4.2.2.3 细胞渗透肽 | 第31页 |
| 4.2.2.4 药物靶向投递分子和诊治型探针 | 第31-33页 |
| 第一部分 探针的设计、合成和鉴定 | 第33-44页 |
| 引言 | 第33-35页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第35-37页 |
| 1.1 短肽GX1 的合成 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂和耗材 | 第35-36页 |
| 1.3 主要仪器 | 第36-37页 |
| 2 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.1 探针GX1-HSA-ICG的合成 | 第37-38页 |
| 2.2 SDS-PAGE和考马斯亮蓝染色（GX1-HSA-ICG的合成鉴定） | 第38-39页 |
| 2.3 可见光-紫外光谱分析 | 第39-40页 |
| 2.4 动态光散射测定探针的水合粒径 | 第40页 |
| 3 实验结果 | 第40-42页 |
| 3.1 GX1-HSA-ICG的合成鉴定 | 第40-41页 |
| 3.2 探针的光学特征 | 第41-42页 |
| 3.3 探针在液相溶液中的粒径以及稳定性 | 第42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 第二部分 探针的体外细胞毒性和靶向特异性研究 | 第44-51页 |
| 引言 | 第44页 |
| 1 实验材料 | 第44-45页 |
| 1.1 细胞系 | 第44页 |
| 1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 主要仪器 | 第45页 |
| 2 实验方法 | 第45-47页 |
| 2.1 细胞培养 | 第45页 |
| 2.2 台盼蓝染色评估探针的毒性 | 第45-46页 |
| 2.3 GX1-HSA-ICG的细胞靶向特异性 | 第46-47页 |
| 2.4 统计学分析 | 第47页 |
| 3 实验结果 | 第47-49页 |
| 3.1 GX1-HSA-ICG无明显细胞毒性 | 第47-48页 |
| 3.2 GX1-HSA-ICG在体外可以特异性靶向Co-HUVEC | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 第三部分 探针的活体近红外荧光成像特异性以及生物分布研究 | 第51-60页 |
| 引言 | 第51页 |
| 1 实验材料 | 第51-52页 |
| 1.1 细胞系 | 第51页 |
| 1.2 实验动物 | 第51页 |
| 1.3 主要试剂和耗材 | 第51-52页 |
| 1.4 主要仪器 | 第52页 |
| 2 实验方法 | 第52-54页 |
| 2.1 细胞培养 | 第52页 |
| 2.2 荷人胃癌SGC7901 细胞裸鼠模型的建立 | 第52页 |
| 2.3 GX1-HSA-ICG用于荷瘤裸鼠的近红外荧光活体成像 | 第52-53页 |
| 2.4 GX1-HSA-ICG在荷瘤裸鼠体内的生物分布 | 第53-54页 |
| 2.5 统计学分析 | 第54页 |
| 3 实验结果 | 第54-56页 |
| 3.1 GX1-HSA-ICG可特异性靶向胃癌组织，用于近红外活体成像 | 第54-55页 |
| 3.2 GX1-HSA-ICG在活体的生物分布 | 第55-56页 |
| 4 讨论 | 第56-60页 |
| 小结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 个人简历和研究成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
