摘要 | 第2-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
引言 | 第9-11页 |
第一部分 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲的纯度检测及抗肿瘤活性筛选 | 第11-21页 |
材料与方法 | 第11-14页 |
1 实验材料 | 第11-12页 |
1.1 细胞株 | 第11页 |
1.2 化合物 | 第11页 |
1.3 试剂与溶液 | 第11页 |
1.4 实验仪器 | 第11-12页 |
2 实验方法 | 第12-14页 |
2.1 高效液相色谱法 | 第12页 |
2.2 细胞培养 | 第12页 |
2.3 四甲基偶氮唑盐(MTT)法 | 第12-13页 |
2.4 细胞形态学的观察 | 第13页 |
2.5 细胞克隆形成实验 | 第13页 |
2.6 细胞侵袭实验 | 第13-14页 |
3 统计学处理 | 第14页 |
结果 | 第14-19页 |
1 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲纯度为 97.62% | 第14页 |
2 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲抑制A549细胞生长 | 第14-15页 |
3 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导A549细胞形态发生变化 | 第15-16页 |
4 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲抑制A549细胞克隆形成 | 第16-17页 |
5 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲抑制A549细胞的侵袭能力 | 第17-19页 |
讨论 | 第19-21页 |
第二部分 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲对A549细胞周期的影响 | 第21-27页 |
材料与方法 | 第21-23页 |
1 实验材料 | 第21-22页 |
1.1 细胞株 | 第21页 |
1.2 化合物 | 第21页 |
1.3 试剂与溶液 | 第21页 |
1.4 实验仪器 | 第21-22页 |
2 实验方法 | 第22-23页 |
2.1 细胞培养 | 第22页 |
2.2 PI单染法检测细胞周期 | 第22页 |
2.3 Western Blot检测相关周期蛋白的表达变化 | 第22-23页 |
3 统计学处理 | 第23页 |
结果 | 第23-25页 |
1 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导A549细胞G0/G1期阻滞 | 第23-24页 |
2 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导CDK4和Cyclin D1表达含量降低 | 第24-25页 |
讨论 | 第25-27页 |
第三部分 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲对A549细胞凋亡的影响 | 第27-38页 |
材料与方法 | 第27-29页 |
1 实验材料 | 第27-28页 |
1.1 细胞株 | 第27页 |
1.2 化合物 | 第27页 |
1.3 试剂与溶液 | 第27页 |
1.4 实验仪器 | 第27-28页 |
2 实验方法 | 第28-29页 |
2.1 细胞培养 | 第28页 |
2.2 Hoechst33258染色实验 | 第28页 |
2.3 Annexin V/PI双染法检测细胞凋亡 | 第28页 |
2.4 Western blot检测有关凋亡蛋白的变化 | 第28页 |
2.5 荧光显微镜检测ROS的变化 | 第28-29页 |
2.6 线粒体膜电位的检测 | 第29页 |
3 统计学处理 | 第29页 |
结果 | 第29-35页 |
1 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导A549细胞凋亡 | 第29-31页 |
2 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导凋亡蛋白表达变化 | 第31-32页 |
3 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导ROS含量升高 | 第32-33页 |
4 2-(3,4-二氟苯亚甲基)氨基硫脲诱导线粒体膜电位明显降低 | 第33-35页 |
讨论 | 第35-38页 |
结论 | 第38-39页 |
参考文献 | 第39-43页 |
综述 | 第43-58页 |
综述参考文献 | 第52-58页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第58-59页 |
缩略词表 | 第59-61页 |
致谢 | 第61-62页 |