| 摘要 | 第9-11页 |
| abstract | 第11-12页 |
| 第1章 综述 | 第13-21页 |
| 1.1 遗传多样性的概念及意义 | 第13-14页 |
| 1.2 遗传多样性研究的方法 | 第14-16页 |
| 1.2.1 形态学标记 | 第14页 |
| 1.2.2 细胞学标记 | 第14-15页 |
| 1.2.3 生物化学标记 | 第15页 |
| 1.2.4 分子遗传标记 | 第15-16页 |
| 1.3 菰的概述 | 第16-21页 |
| 1.3.1 菰的价值及其利用 | 第17-19页 |
| 1.3.2 菰在遗传标记的研究 | 第19-21页 |
| 第2章 梁子湖野生菰种质资源调查 | 第21-33页 |
| 2.1 梁子湖概况 | 第21-23页 |
| 2.1.1 梁子湖形成及演变 | 第21-22页 |
| 2.1.2 地理位置及组成 | 第22页 |
| 2.1.3 气候及水文 | 第22-23页 |
| 2.1.4 土壤 | 第23页 |
| 2.2 梁子湖野生菰种质资源调查 | 第23-28页 |
| 2.2.1 前人研究成果 | 第23-25页 |
| 2.2.2 研究方法 | 第25页 |
| 2.2.3 样品采集点地理信息 | 第25-28页 |
| 2.3 梁子湖野生菰种质资源分析 | 第28-30页 |
| 2.4 梁子湖野生菰生境面临的挑战 | 第30-32页 |
| 2.5 讨论 | 第32-33页 |
| 第3章 梁子湖野生菰遗传多样性SSR分析 | 第33-45页 |
| 3.1 材料与方法 | 第33-35页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 3.1.2 主要试剂及仪器 | 第33页 |
| 3.1.3 42个梁子湖菰居群基因DNA提取 | 第33-34页 |
| 3.1.4 SSR-PCR反应 | 第34页 |
| 3.1.5 SSR扩增产物的检测 | 第34页 |
| 3.1.6 数据统计分析 | 第34-35页 |
| 3.2 结果与分析 | 第35-43页 |
| 3.2.1 梁子湖野生菰的遗传多样性分析 | 第35-36页 |
| 3.2.2 遗传多样性分析 | 第36-38页 |
| 3.2.3 遗传距离和遗传相似系数 | 第38-41页 |
| 3.2.4 AMOVA分子变异分析 | 第41页 |
| 3.2.5 聚类分析 | 第41-43页 |
| 3.3 讨论 | 第43-45页 |
| 第4章 基于ISSR标记对梁子湖野生菰遗传多样性数据分析 | 第45-57页 |
| 4.1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第45页 |
| 4.1.2 主要试剂及仪器 | 第45页 |
| 4.1.3 42个梁子湖菰居群基因DNA提取 | 第45页 |
| 4.1.4 ISSR-PCR反应 | 第45-46页 |
| 4.1.5 ISSR扩增产物的检测 | 第46页 |
| 4.1.6 数据统计分析 | 第46-47页 |
| 4.2 结果与分析 | 第47-55页 |
| 4.2.1 梁子湖野生菰的遗传多样性分析 | 第47-48页 |
| 4.2.2 遗传多样性分析 | 第48-50页 |
| 4.2.3 遗传距离和遗传相似系数 | 第50-53页 |
| 4.2.4 AMOVA分子变异分析 | 第53页 |
| 4.2.5 聚类分析 | 第53-55页 |
| 4.3 讨论 | 第55-57页 |
| 第5章 野生菰资源遗传多样性SSR和ISSR比较研究 | 第57-61页 |
| 5.1 材料与方法 | 第57-58页 |
| 5.1.1 材料 | 第57页 |
| 5.1.2 SSR分析和ISSR分析 | 第57页 |
| 5.1.3 数据处理与分析 | 第57-58页 |
| 5.2 结果与分析 | 第58-59页 |
| 5.2.1 信息量检测效率比较 | 第58页 |
| 5.2.2 两种标记间的遗传距离与遗传相似系数比较 | 第58-59页 |
| 5.2.3 AMOVA分子变异分析 | 第59页 |
| 5.2.4 聚类分析结果比较 | 第59页 |
| 5.3 讨论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 附录1 实验所需的化学试剂 | 第67-69页 |
| 附录2 实验所需主要仪器,仪器型号公司 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
