| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-20页 |
| 2.1 材料 | 第13-15页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 实验仪器设备 | 第13页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第14-15页 |
| 2.2 方法 | 第15-19页 |
| 2.2.1 孕鼠模型制作 | 第15页 |
| 2.2.2 宫内感染模型的建立及实验分组 | 第15-16页 |
| 2.2.3 指标测定和方法 | 第16-19页 |
| 2.3 统计学方法 | 第19-20页 |
| 第3章 结果 | 第20-26页 |
| 3.1 孕鼠一般情况 | 第20页 |
| 3.2 各组孕鼠子宫及胎盘组织 HE 染色 | 第20页 |
| 3.3 各组仔鼠脑组织 HE 染色 | 第20-21页 |
| 3.4 各组仔鼠脑组织中 S-100B 的变化 | 第21-22页 |
| 3.5 各组仔鼠脑组织中 ROS 的变化 | 第22-23页 |
| 3.6 各组仔鼠脑组织中 IL-1β的变化 | 第23-24页 |
| 3.7 S-100B 与 ROS 之间进行相关性分析 | 第24页 |
| 3.8 ROS 与 IL-1β之间进行相关性分析 | 第24-25页 |
| 3.9 S-100B 与 IL-1β之间进行相关性分析 | 第25-26页 |
| 第4章 讨论 | 第26-32页 |
| 4.1 宫内感染致仔鼠脑损伤的动物模型的制备 | 第26-27页 |
| 4.2 宫内感染与脑白质损伤 | 第27-28页 |
| 4.3 宫内感染后仔鼠脑组织中 S-100B、ROS、IL-1β的表达 | 第28-30页 |
| 4.4 DHA 对宫内感染导致的仔鼠脑损伤的保护作用 | 第30-32页 |
| 第5章 结论与展望 | 第32-33页 |
| 5.1 结论 | 第32页 |
| 5.2 展望 | 第32-33页 |
| 致谢 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-37页 |
| 附图 | 第37-43页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第43-44页 |
| 综述 | 第44-48页 |
| 参考文献 | 第47-48页 |
