| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-14页 |
| 2 材料和方法 | 第14-26页 |
| 2.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.2 药物与试剂 | 第14-16页 |
| 2.3 主要仪器与设备 | 第16-17页 |
| 2.4 方法 | 第17-26页 |
| 2.4.1 试剂配制 | 第17-20页 |
| 2.4.2 动物分组与动物模型处理 | 第20页 |
| 2.4.3 标本处理 | 第20-22页 |
| 2.4.4 脑组织石蜡切片尼氏体染色 | 第22页 |
| 2.4.5 脑组织石蜡切片刚果红染色 | 第22页 |
| 2.4.6 免疫组织化学法检测C1Q、C3C、C3D、GFAP、6E10表达水平 | 第22-23页 |
| 2.4.7 免疫荧光法检测C3和GFAP表达水平及共定位情况 | 第23-24页 |
| 2.4.8 WESTERN BLOT法检测GFAP、C1Q、C3的表达水平 | 第24-26页 |
| 3 结果 | 第26-33页 |
| 3.1 刚果红染色观察各实验组淀粉样物质沉积 | 第26页 |
| 3.2 免疫组化检测各实验组6E10的表达水平 | 第26-27页 |
| 3.3 NISSL染色观察各实验组神经元的功能 | 第27-28页 |
| 3.4 免疫组化及WB检测各实验组GFAP的表达水平 | 第28-29页 |
| 3.5 免疫组化及WB检测各实验组C1Q的表达水平 | 第29-30页 |
| 3.6 免疫荧光检测各实验组C3与GFAP的表达水平与共定位 | 第30-32页 |
| 3.7 免疫组化检测各实验组C3C、C3D的表达水平 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-37页 |
| 4.1 APPSWE/PSΔE9双转基因AD小鼠模型 | 第33页 |
| 4.2 AD中神经元丢失及其功能的改变 | 第33-34页 |
| 4.3 补体C1Q、C3在AD中的意义 | 第34页 |
| 4.4 TANⅡA对APPSWE/PSΔE9双转基因AD小鼠抗炎作用及机制 | 第34-37页 |
| 5 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 综述 | 第42-49页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 在读硕士期间的研究成果及发表的学术论文 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
