| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-13页 |
| 第二章 材料与方法 | 第13-24页 |
| 2.1 材料 | 第13-17页 |
| 2.1.1 实验细胞与动物 | 第13页 |
| 2.1.2 试剂及耗材 | 第13-14页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第14-16页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-24页 |
| 2.2.1 ABPPk的分离与纯化 | 第17页 |
| 2.2.2 细胞的培养与处理 | 第17-18页 |
| 2.2.3 细胞的活力测定(MTT比色法) | 第18页 |
| 2.2.4 凋亡细胞的Tunel染色 | 第18页 |
| 2.2.5 LDH的测定 | 第18-19页 |
| 2.2.6 细胞线粒体膜电势染色法 | 第19-20页 |
| 2.2.7 MPTP制作小鼠帕金森模型 | 第20页 |
| 2.2.8 行为学测试 | 第20页 |
| 2.2.9 免疫组织化学 | 第20-21页 |
| 2.2.10 免疫荧光染色 | 第21页 |
| 2.2.11 Nissl染色 | 第21-22页 |
| 2.2.12 RNA的提取和实时定量PCR(QRT-PCR) | 第22-23页 |
| 2.2.13 细胞和组织的蛋白提取 | 第23页 |
| 2.2.14 Westernblot | 第23页 |
| 2.2.15 统计结果分析 | 第23-24页 |
| 第三章 结果 | 第24-44页 |
| 3.1 ABPPk可保护SH-SY5Y/原代DNs细胞的活力 | 第24-27页 |
| 3.1.1 ABPPk的制备 | 第24-25页 |
| 3.1.2 ABPPk对神经毒素处理的SH-SY5Y/原代DNs细胞活力的影响 | 第25-26页 |
| 3.1.3 ABPPk可减少神经毒素处理的SH-SY5Y细胞/原代DNsLDH的释放量 | 第26-27页 |
| 3.2 ABPPk可减少SH-SY5Y/原代DNs的凋亡 | 第27-31页 |
| 3.3 ABPPk对MPP+诱导细胞凋亡过程中线粒体膜电势的影响 | 第31-32页 |
| 3.4 ABPPk对Bcl-2/Bax的影响 | 第32-35页 |
| 3.5 ABPPk可改善MPTP诱导的PD模型小鼠的行为学参数 | 第35-36页 |
| 3.6 ABPPk防止小鼠中脑黑质致密部酪氨酸羟化酶(TH)的损失 | 第36-38页 |
| 3.7 ABPPk抑制SNpc区小胶质细胞和星形胶质细胞的活化 | 第38-40页 |
| 3.8 ABPPk减少中脑黑质致密部α-突触核蛋白的积聚 | 第40-41页 |
| 3.9 ABPPk下调神经炎症和凋亡信号通路 | 第41-42页 |
| 3.10 ABPPk在预防多巴胺能神经元的损失和PD发病中的作用模型 | 第42-44页 |
| 第四章 讨论 | 第44-46页 |
| 第五章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 英文缩略词 | 第54-56页 |
| 综述 | 第56-65页 |
| 综述参考文献 | 第61-65页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表论文及所获奖励 | 第65-66页 |
| 在读期间发表的论文 | 第65页 |
| 在读期间所获奖励 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
