| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 RTN3与RTN家族 | 第11-17页 |
| 1.1.1 RTN家族及其同源结构 | 第11-12页 |
| 1.1.2 RTNs的定位与功能 | 第12-14页 |
| 1.1.3 RTN3的结构 | 第14页 |
| 1.1.4 RTN3与凋亡 | 第14-15页 |
| 1.1.5 RTN3与动脉粥样硬化 | 第15-17页 |
| 1.2 研究目的与意义 | 第17-19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 细胞株、血样、病历来源 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂和产地 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要实验设备和产地 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-33页 |
| 2.2.1 技术路线 | 第21-22页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第22-25页 |
| 2.2.3 样品的制备 | 第25-26页 |
| 2.2.4 人血清样品的制备 | 第26页 |
| 2.2.5 人外周血中单个核细胞的提取 | 第26-27页 |
| 2.2.6 流式细胞术检测细胞表面蛋白表达 | 第27页 |
| 2.2.7 Western Blot | 第27-29页 |
| 2.2.8 细胞免疫荧光 | 第29-30页 |
| 2.2.9 DAB染色 | 第30-31页 |
| 2.2.10 ELISA | 第31-32页 |
| 2.2.11 实验数据的分析 | 第32-33页 |
| 3 实验结果 | 第33-42页 |
| 3.1 WB检测血清RTN3 | 第33-34页 |
| 3.1.1 WB检测正常人和AS病人血清中的RTN3 | 第33页 |
| 3.1.2 WB检测胰酶处理血清中RTN3的降解情况 | 第33-34页 |
| 3.1.3 WB检测不同浓度胰酶处理后正常人和病人血清中RTN3的降解情况 | 第34页 |
| 3.2 ELISA检测血清RTN3的含量 | 第34-36页 |
| 3.2.1 血清最适稀释比 | 第34-35页 |
| 3.2.2 病人与正常人血清中RTN3含量的检测 | 第35页 |
| 3.2.3 血清中RTN3与其他指标相关性的分析 | 第35-36页 |
| 3.3 细胞表面及上清中RTN3的检测 | 第36-38页 |
| 3.3.1 蛋白质芯片分析血液系统中RTN3表达情况 | 第36-37页 |
| 3.3.2 流式检测细胞表面RTN3的表达 | 第37-38页 |
| 3.3.3 WB检测细胞上清中的RTN3 | 第38页 |
| 3.4 K562细胞分化过程中RTN3表达情况的检测 | 第38-42页 |
| 3.4.1 DAB染色检测K562细胞的分化情况 | 第38-39页 |
| 3.4.2 WB检测K562细胞分化过程中RTN3表达的情况 | 第39-40页 |
| 3.4.3 细胞免疫荧光检测K562细胞分化过程中RTN3分布的情况 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-48页 |
| 4.1 血清RTN3的检测 | 第42页 |
| 4.2 血清RTN3降解的检测 | 第42-43页 |
| 4.3 sRTN3的来源及在正常人与病人间的差异 | 第43页 |
| 4.4 RTN3在血清中的含量与血清学数据的相互关系 | 第43-44页 |
| 4.5 RTN3在血液系统中的作用 | 第44-45页 |
| 4.6 RTN3在K562细胞分化过程中表达的变化 | 第45-46页 |
| 4.7 内质网系统与细胞分化的关系 | 第46-48页 |
| 4.7.1 内质网Ca~(2+)调节蛋白与细胞分化 | 第46-47页 |
| 4.7.2 内质网应激与细胞分化 | 第47-48页 |
| 5 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
