中文摘要 | 第7-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
英文缩略语表 | 第15-17页 |
第一章 前言 | 第17-21页 |
一、研究背景 | 第17页 |
二、炎症反应机理 | 第17-18页 |
三、丁香属植物化学成分及植物资源 | 第18-19页 |
四、中药抗炎的活性成分及作用机制 | 第19-20页 |
五、总结与展望 | 第20-21页 |
第二章 关东丁香叶中总黄酮和总环烯醚萜提取工艺优化的研究 | 第21-31页 |
实验材料与方法 | 第21-25页 |
一、仪器与实验试剂 | 第21-22页 |
(一)实验仪器 | 第21页 |
(二)实验材料与试剂 | 第21-22页 |
二、实验方法 | 第22-25页 |
(一)关东丁香叶总黄酮提取分离及含量测定 | 第22-23页 |
(二)关东丁香叶总环烯醚萜的提取分离及含量测定 | 第23-25页 |
三、实验结果 | 第25-29页 |
(一)总黄酮和总环烯醚萜提取优化结果 | 第25-28页 |
(二)方法学考察结果 | 第28-29页 |
(三)测定波长的选择结果 | 第29页 |
四、讨论 | 第29-31页 |
(一)提取方法的探究 | 第29页 |
(二)分离工艺的探究 | 第29-30页 |
(三)含量测定方法的探究 | 第30-31页 |
第三章 HPLC同时测定关东丁香叶中多种活性成分含量方法探究 | 第31-40页 |
一、仪器与实验试剂 | 第31-32页 |
(一)实验仪器 | 第31页 |
(二)实验材料与试剂 | 第31-32页 |
二、实验药物的制备 | 第32页 |
(一)对照品溶液的制备 | 第32页 |
(二)供试品溶液的制备 | 第32页 |
三、HPLC实验及方法学考察 | 第32-34页 |
(一)色谱条件 | 第32页 |
(二)方法学考察 | 第32-34页 |
四、结果 | 第34-38页 |
(一)线性关系、检测限、定量限考察结果 | 第34-35页 |
(二)加标回收率结果 | 第35-37页 |
(三)各药材样品的含量测定结果 | 第37-38页 |
五、讨论 | 第38-40页 |
(一)流动相的选择 | 第38页 |
(二)酸性溶液种类和浓度的影响 | 第38页 |
(三)梯度洗脱的影响 | 第38-39页 |
(四)检测器柱温和波长的影响 | 第39页 |
(五)不同提取方法考察 | 第39页 |
(六)结果分析 | 第39-40页 |
第四章 关东丁香叶提取物的抗炎作用机理初步探究 | 第40-56页 |
一、实验材料 | 第40-41页 |
(一)实验药材 | 第40页 |
(二)实验动物 | 第40页 |
(三)实验试剂 | 第40-41页 |
(四)实验仪器 | 第41页 |
二、实验方法 | 第41-47页 |
(一)实验药物的制备 | 第41页 |
(二)实验试剂的配制 | 第41-43页 |
(三)实验动物分组及模型制作 | 第43-44页 |
(四)一般指标检测 | 第44页 |
(五)组织病理学观察 | 第44-45页 |
(六)肝组织TNF-α和ICAM-1 细胞水平免疫组化检测 | 第45-46页 |
(七)肝组织TNF-α和ICAM-1 蛋白表达的免疫印迹检测 | 第46-47页 |
三、结果 | 第47-53页 |
(一)一般体征情况结果 | 第47-48页 |
(二)ALT和AST的活性结果 | 第48页 |
(三)MDA含量和SOD活性结果 | 第48-49页 |
(四)各组实验小鼠肝指数结果 | 第49-50页 |
(五)肝组织HE染色形态学观察结果 | 第50页 |
(六)肝组织TNF-α和ICAM-1 细胞水平免疫组化检测结果 | 第50-51页 |
(七)肝组织TNF-α和ICAM-1 细胞水平免疫印迹检测结果 | 第51-53页 |
四、讨论 | 第53-56页 |
(一)抗炎有效部位的确定 | 第53页 |
(二)炎症小鼠模型的选择 | 第53页 |
(三)阳性对照药的选择 | 第53-54页 |
(四)关东丁香叶提取物对小鼠血清中ALT和AST活性的影响 | 第54页 |
(五)关东丁香叶提取物对小鼠抗氧化作用的影响 | 第54页 |
(六)关东丁香叶提取物对各组小鼠肝组织HE染色、免疫组化的影响 | 第54-56页 |
第五章 结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-62页 |
附录 | 第62-65页 |
一、在学期间科研成绩 | 第62-63页 |
二、致谢 | 第63-64页 |
三、个人简历 | 第64-65页 |
附图 | 第65-72页 |