| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 前列腺癌的发病机理及分子机制 | 第11-13页 |
| 1.1.1 前列腺癌的发病机理 | 第11-12页 |
| 1.1.2 前列腺癌发生的分子机制 | 第12-13页 |
| 1.2 前列腺癌治疗进展 | 第13-14页 |
| 1.3 前列腺癌鼠模型研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.1 自发和诱发鼠模型 | 第14页 |
| 1.3.2 异种移植鼠模型 | 第14-15页 |
| 1.3.2.1 原位肿瘤模型 | 第14-15页 |
| 1.3.2.2 皮下移植瘤模型 | 第15页 |
| 1.3.3 前列腺癌基因敲除鼠模型 | 第15-17页 |
| 1.3.3.1 Cre/LoxP 重组系统 | 第15页 |
| 1.3.3.2 Cre/LoxP 系统介导的鼠 PTEN 肿瘤抑制基因的失活 | 第15-17页 |
| 1.4 天然小分子化合物雷公藤甲素 | 第17-18页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第18页 |
| 1.6 实验技术路线 | 第18-19页 |
| 第二章 实验方法 | 第19-25页 |
| 2.1 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 实验动物、细胞 | 第20页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第20-21页 |
| 2.1.4.1 细胞培养所用试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.4.2 BALB/c 裸鼠处理所用试剂 | 第21页 |
| 2.1.4.3 HE 染色所用试剂 | 第21页 |
| 2.1.4.4 免疫荧光所用试剂 | 第21页 |
| 2.2 主要实验方法 | 第21-25页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第21-22页 |
| 2.2.2 模型构建及药物处理 | 第22页 |
| 2.2.2.1 构建 BALB/c 裸鼠皮下抑制瘤模型 | 第22页 |
| 2.2.2.2 分组及给药 | 第22页 |
| 2.2.3 肿瘤组织以及相关器官的HE 染色 | 第22-23页 |
| 2.2.4 肿瘤组织中SENP1 的免疫荧光染色 | 第23页 |
| 2.2.5 肿瘤组织中SENP1 的免疫组化染色 | 第23-25页 |
| 第三章 实验结果 | 第25-33页 |
| 3.1 成功构建了前列腺癌肿瘤模型 | 第25页 |
| 3.2 雷公藤甲素体内抑制前列腺癌的生长 | 第25-27页 |
| 3.2.1 雷公藤甲素抑制前列腺癌实体瘤体积的增长 | 第25-26页 |
| 3.2.2 雷公藤甲素抑制前列腺癌实体瘤重量的增长 | 第26-27页 |
| 3.3 肿瘤组织病理检测及 SENP1 的表达 | 第27-30页 |
| 3.3.1 肿瘤组织 HE（苏木精-伊红）染色 | 第27-28页 |
| 3.3.2 肿瘤组织中SENP1 的表达变化 | 第28-30页 |
| 3.4 雷公藤甲素的毒性检测 | 第30-33页 |
| 3.4.1 雷公藤甲素对裸鼠体重的影响 | 第30-31页 |
| 3.4.2 雷公藤甲素对裸鼠脏器（肝、肾）的影响 | 第31-33页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第33-35页 |
| 4.1 雷公藤甲素对人前列腺癌细胞PC-3 裸鼠实体瘤的影响 | 第33页 |
| 4.2 SENP1 的作用机理，及在前列腺癌中的表达 | 第33-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 缩略语表 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 作者简介 | 第40页 |
