| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 中英缩略词表 | 第10-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 肝癌的流行病学 | 第12页 |
| 1.2 原发性肝细胞肝癌的治疗现状 | 第12-17页 |
| 1.2.1 原发性肝细胞性肝癌临床诊断 | 第12-13页 |
| 1.2.2 肝癌的主要治疗进展 | 第13-16页 |
| 1.2.3 CXC195（川芎嗪）在肝癌治疗中的研究 | 第16-17页 |
| 1.3 与肝癌相关的信号通路和肝癌的分子靶向治疗 | 第17-18页 |
| 1.4 肝癌细胞的内质网应激 | 第18-20页 |
| 1.5 本课题的研究内容和技术路线 | 第20-22页 |
| 1.5.1 课题研究的目的与意义 | 第20页 |
| 1.5.2 课题的研究内容 | 第20-21页 |
| 1.5.3 课题的技术路线 | 第21-22页 |
| 第2章 CXC195对HepG2细胞生长增殖和凋亡的影响 | 第22-39页 |
| 引言 | 第22页 |
| 2.1 背景及目的 | 第22-23页 |
| 2.2 实验材料及试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.1 试剂的配制 | 第23-24页 |
| 2.3 仪器 | 第24-25页 |
| 2.4 细胞的培养、保存和计数 | 第25-31页 |
| 2.4.1 细胞培养 | 第25-26页 |
| 2.4.2 台盼蓝拒染法检测CXC195对HepG2细胞和L-02细胞生长的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.3 MTT比色法检测CXC195抑制体外培养的HepG2的增殖 | 第27-28页 |
| 2.4.4 流式细胞术分析细胞周期以及细胞凋亡（FCM） | 第28-31页 |
| 2.5 统计学方法 | 第31页 |
| 2.6 实验结果 | 第31-36页 |
| 2.6.1 台盼蓝拒染法检测CXC195抑制HepG2细胞和L-02细胞的增殖 | 第31-32页 |
| 2.6.2 MTT比色法检测CXC195对肝癌细胞HepG2的增殖的影响 | 第32-33页 |
| 2.6.3 CXC195对HepG2细胞周期数量比例的影响 | 第33-34页 |
| 2.6.4 CXC195作用后HepG2细胞凋亡的变化 | 第34-36页 |
| 2.7 讨论与小结 | 第36-38页 |
| 2.8 结论 | 第38-39页 |
| 第3章 CXC195对HepG2细胞PI3K-AKT-mTOR信号通路和内质网应激的影响 | 第39-56页 |
| 引言 | 第39页 |
| 3.1 背景及目的 | 第39-40页 |
| 3.2 实验材料及试剂 | 第40-42页 |
| 3.3 仪器 | 第42-43页 |
| 3.4 实验方法 | 第43-47页 |
| 3.4.1 分光光度法检测HepG2细胞caspase-3，-8，-9 活性的变化 | 第43-44页 |
| 3.4.2 Western blotting 分析 | 第44-47页 |
| 3.5 统计分析 | 第47-48页 |
| 3.6 实验结果 | 第48-52页 |
| 3.6.1 CXC195诱导caspase-3，-8，-9 的活化 | 第48页 |
| 3.6.2 Western Blotting实验结果 | 第48-52页 |
| 3.7 讨论 | 第52-55页 |
| 3.8 结论 | 第55-56页 |
| 全文总结 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第66-67页 |
| 综述 | 第67-79页 |
| 参考文献 | 第76-79页 |
