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CXC195通过抑制PI3K-AKT-mTOR信号通路和激活内质网应激调控人肝癌细胞增殖及凋亡

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
中英缩略词表第10-12页
第1章 绪论第12-22页
    1.1 肝癌的流行病学第12页
    1.2 原发性肝细胞肝癌的治疗现状第12-17页
        1.2.1 原发性肝细胞性肝癌临床诊断第12-13页
        1.2.2 肝癌的主要治疗进展第13-16页
        1.2.3 CXC195(川芎嗪)在肝癌治疗中的研究第16-17页
    1.3 与肝癌相关的信号通路和肝癌的分子靶向治疗第17-18页
    1.4 肝癌细胞的内质网应激第18-20页
    1.5 本课题的研究内容和技术路线第20-22页
        1.5.1 课题研究的目的与意义第20页
        1.5.2 课题的研究内容第20-21页
        1.5.3 课题的技术路线第21-22页
第2章 CXC195对HepG2细胞生长增殖和凋亡的影响第22-39页
    引言第22页
    2.1 背景及目的第22-23页
    2.2 实验材料及试剂第23-24页
        2.2.1 试剂的配制第23-24页
    2.3 仪器第24-25页
    2.4 细胞的培养、保存和计数第25-31页
        2.4.1 细胞培养第25-26页
        2.4.2 台盼蓝拒染法检测CXC195对HepG2细胞和L-02细胞生长的影响第26-27页
        2.4.3 MTT比色法检测CXC195抑制体外培养的HepG2的增殖第27-28页
        2.4.4 流式细胞术分析细胞周期以及细胞凋亡(FCM)第28-31页
    2.5 统计学方法第31页
    2.6 实验结果第31-36页
        2.6.1 台盼蓝拒染法检测CXC195抑制HepG2细胞和L-02细胞的增殖第31-32页
        2.6.2 MTT比色法检测CXC195对肝癌细胞HepG2的增殖的影响第32-33页
        2.6.3 CXC195对HepG2细胞周期数量比例的影响第33-34页
        2.6.4 CXC195作用后HepG2细胞凋亡的变化第34-36页
    2.7 讨论与小结第36-38页
    2.8 结论第38-39页
第3章 CXC195对HepG2细胞PI3K-AKT-mTOR信号通路和内质网应激的影响第39-56页
    引言第39页
    3.1 背景及目的第39-40页
    3.2 实验材料及试剂第40-42页
    3.3 仪器第42-43页
    3.4 实验方法第43-47页
        3.4.1 分光光度法检测HepG2细胞caspase-3,-8,-9 活性的变化第43-44页
        3.4.2 Western blotting 分析第44-47页
    3.5 统计分析第47-48页
    3.6 实验结果第48-52页
        3.6.1 CXC195诱导caspase-3,-8,-9 的活化第48页
        3.6.2 Western Blotting实验结果第48-52页
    3.7 讨论第52-55页
    3.8 结论第55-56页
全文总结第56-60页
致谢第60-61页
参考文献第61-66页
攻读学位期间的研究成果第66-67页
综述第67-79页
    参考文献第76-79页

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