| 摘要 | 第3-9页 |
| ABSTRACT | 第9-13页 |
| 第一章 引言 | 第17-29页 |
| 1.1 溺死定义及溺死鉴定现状 | 第17-18页 |
| 1.2 硅藻检验在溺死诊断中的应用 | 第18-22页 |
| 1.2.1 硅藻提取方法 | 第19-21页 |
| 1.2.2 硅藻的检测方法 | 第21-22页 |
| 1.3 蓝藻、绿藻等溺死相关藻类在溺死诊断中的应用 | 第22-24页 |
| 1.4 其它方法在溺死诊断中的应用研究 | 第24-26页 |
| 1.4.1 电解质分析 | 第24页 |
| 1.4.2 化学物质 | 第24-26页 |
| 1.5 PCR技术(分子生物学技术)检测藻类在溺死诊断中的应用 | 第26-27页 |
| 1.6 研究意义 | 第27-29页 |
| 第二章 PCR-PAGE检测溺死相关藻类16SrDNA方法建立 | 第29-39页 |
| 2.1 材料 | 第30-32页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第30页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验兔分组 | 第31页 |
| 2.1.4 实验动物模型制作 | 第31页 |
| 2.1.5 样本来源 | 第31-32页 |
| 2.2 方法 | 第32-35页 |
| 2.2.1 水样内藻类DNA的提取 | 第32页 |
| 2.2.2 动物组织内藻类DNA的提取 | 第32-33页 |
| 2.2.3 PCR扩增 | 第33页 |
| 2.2.4 PAGE电泳产物检测 | 第33-35页 |
| 2.2.5 DNA产物测序分析 | 第35页 |
| 2.3 结果 | 第35-37页 |
| 2.3.1 PCR-PAGE检测7种标准藻类产物结果 | 第35-36页 |
| 2.3.2 PCR扩增人、兔、真菌、细菌基因PAGE图 | 第36页 |
| 2.3.3 3组实验兔脏器PAGE结果 | 第36-37页 |
| 2.3.4 PCR产物测序 | 第37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 毛细管电泳检测PCR产物在溺死诊断中的研究 | 第39-48页 |
| 3.1 材料 | 第39-40页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.2 主要试剂及耗材 | 第40页 |
| 3.1.3 样本来源 | 第40页 |
| 3.2 方法 | 第40-43页 |
| 3.2.1 水样及动物组织中藻类DNA提取 | 第40-42页 |
| 3.2.2 PCR扩增 | 第42页 |
| 3.2.3 毛细管电泳 | 第42-43页 |
| 3.3 结果 | 第43-46页 |
| 3.3.1 7种常见溺死相关藻类毛细管电泳所测产物大小 | 第43页 |
| 3.3.2 溺死组实验兔结果 | 第43-45页 |
| 3.3.3 毛细管电泳与PAGE两种方法检测PCR产物特点比较 | 第45-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-48页 |
| 第四章 PCR-CE与微波消解-真空抽滤-电镜扫描法在水中尸体案例脏器藻类检出结果比较 | 第48-63页 |
| 4.1 样本来源 | 第49-50页 |
| 4.2 微波消解-真空抽滤-电镜扫描法主要材料及方法 | 第50-52页 |
| 4.2.1 材料及试剂 | 第50-51页 |
| 4.2.2 方法 | 第51-52页 |
| 4.3 微波消解-真空抽滤-电镜扫描法检测案例样本结果 | 第52-55页 |
| 4.4 PCR-CE法检测尸体脏器组织样本 | 第55-61页 |
| 4.4.1 主要仪器 | 第55页 |
| 4.4.2 主要试剂及耗材 | 第55-56页 |
| 4.4.3 方法 | 第56-58页 |
| 4.4.4 PCR-CE法检测尸体案例脏器结果 | 第58-61页 |
| 4.5 讨论 | 第61-63页 |
| 全文小结 | 第63页 |
| 存在的问题和展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 附录 | 第71-82页 |
| 研究生期间研究成果 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 附件 | 第85-86页 |
