| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文术语缩略词表 | 第7-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 第一部分 实验材料和方法 | 第14-26页 |
| 第一章 实验材料 | 第14-17页 |
| 1.1 细胞株与药品 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要仪器 | 第15页 |
| 1.4 实验所需试剂配制 | 第15-17页 |
| 第二章 体外实验 | 第17-23页 |
| 2.1 MTT法 | 第17-18页 |
| 2.2 流式细胞仪Annexin V和PI双染色法检测细胞凋亡 | 第18页 |
| 2.3 流式细胞仪PI检测细胞周期 | 第18-19页 |
| 2.4 激光共聚焦扫描显微镜检测法 | 第19-20页 |
| 2.5 FICD及与Sorafenib联合用药对人肝癌HepG2细胞蛋白表达活性的影响 | 第20-23页 |
| 第三章 体内实验 | 第23-26页 |
| 3.1 实验动物 | 第23页 |
| 3.2 FICD及联合用药对小鼠肝癌实体瘤的影响 | 第23-24页 |
| 3.3 FICD两种给药途径（灌胃和注射）对小鼠实体瘤的影响 | 第24页 |
| 3.4 小鼠肝癌实体瘤组织病理切片的形态学观察 | 第24-25页 |
| 3.5 统计方法 | 第25-26页 |
| 第二部分 实验结果与分析 | 第26-50页 |
| 第一章 FICD抗肿瘤的作用 | 第26-34页 |
| 1.1 FICD对不同的癌细胞增殖的影响 | 第26页 |
| 1.2 FICD对细胞HepG2增殖的抑制作用 | 第26-27页 |
| 1.3 流式细胞仪检测FICD对细胞HepG2凋亡的影响 | 第27-28页 |
| 1.4 流式细胞仪检测FICD对细胞HepG2周期的影响 | 第28-29页 |
| 1.5 激光共聚焦显微镜观察细胞形态变化 | 第29-30页 |
| 1.6 Western Blotting检测β-Catenin、C-Myc、CyclinD1、Ki-67 和Vimentin蛋白表达量的变化 | 第30-31页 |
| 1.7 FICD对荷H22肝癌小鼠肿瘤生长的抑制作用 | 第31-32页 |
| 1.8 FICD给药途径对荷H22肝癌小鼠肿瘤生长的抑制作用 | 第32-33页 |
| 1.9 HE染色 | 第33-34页 |
| 第二章 联合用药抗肿瘤的作用 | 第34-45页 |
| 2.1 联合用药对人肝癌细胞HepG2增殖的抑制作用 | 第34-36页 |
| 2.2 FICD与Sorafenib联合用药对人肝癌HepG2细胞凋亡的影响 | 第36-37页 |
| 2.3 FICD与Sorafenib联合用药对人肝癌HepG2细胞周期的影响 | 第37-38页 |
| 2.4 激光共聚焦扫描显微镜AnneixnV-FITC及PI双染色实验 | 第38-39页 |
| 2.5 Western Blotting检测β-Catenin、C-Myc、CyclinD1、Ki-67 和Vimentin蛋白表达量的变化 | 第39-43页 |
| 2.6 FICD与Sorafenib联合对荷H22肝癌小鼠肿瘤生长的抑制作用 | 第43-44页 |
| 2.7 HE染色 | 第44-45页 |
| 第三章 结论 | 第45-46页 |
| 第四章 实验讨论 | 第46-50页 |
| 4.1 FICD抑制不同的癌症细胞增殖的体外实验 | 第46页 |
| 4.2 FICD诱导人肝癌细胞HepG2周期G2/M期阻滞 | 第46-47页 |
| 4.3 FICD诱导人肝癌细胞HepG2中的β-Catenin、C-Myc、CyclinD1、Ki-67和Vimentin蛋白表达的变化 | 第47-48页 |
| 4.4 联合用药抑制肝癌细胞HepG2生长的作用 | 第48页 |
| 4.5 联合用药诱导人肝癌细胞HepG2周期G1/S期阻滞 | 第48-49页 |
| 4.6 联合用药诱导人肝癌细胞HepG2中的β-catenin、C-Myc、Cyclin D1、Ki-67 和Vimentin蛋白表达的变化 | 第49页 |
| 4.7 联合用药抑制C-Myc蛋白的表达 | 第49页 |
| 4.8 联合用药抑制小鼠肝癌实体瘤生长的作用 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 在学期间的研究成果 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 附录 | 第56-62页 |
