| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10页 |
| 1 前言 | 第12-18页 |
| 2 材料 | 第18-19页 |
| 3 方法 | 第19-26页 |
| 3．1 传代培养 | 第19页 |
| 3．2 低温胁迫时细胞膜流动性的测定 | 第19-20页 |
| 3．2．1 细胞的准备及DPH的配制 | 第19页 |
| 3．2．2 荧光偏振度的测定 | 第19-20页 |
| 3．3 低温胁迫时钙离子水平的测定 | 第20页 |
| 3．3．1 培养细胞的处理 | 第20页 |
| 3．3．2 测定ZC-7901细胞及CBS细胞钙离子水平 | 第20页 |
| 3．4 低温胁迫时ATP酶活性的测定 | 第20-21页 |
| 3．4．1 标准曲线制作 | 第20-21页 |
| 3．4．2 粗酶液的提取 | 第21页 |
| 3．4．3 测定ATP酶活性 | 第21页 |
| 3．5 低温胁迫时丙二醛（MDA）含量的测定 | 第21-22页 |
| 3．6 超氧阴离子自由基（O_2~-）的测定 | 第22页 |
| 3．7 低温胁迫时超氧化物歧化酶（SOD）的变化 | 第22-23页 |
| 3．7．1 邻苯三酚自氧化速率的测定 | 第22页 |
| 3．7．2 粗酶液的提取 | 第22-23页 |
| 3．7．3 SOD活性的测定 | 第23页 |
| 3．8 低温胁迫时过氧化氢酶（CAT）活性的变化 | 第23-24页 |
| 3．8．1 酶液的提取 | 第23页 |
| 3．8．2 过氧化氢酶活性的测定 | 第23-24页 |
| 3．9 低温胁迫时过氧化物酶（POD）活性的变化 | 第24页 |
| 3．9．1 酶液的提取 | 第24页 |
| 3．9．2 POD活性的测定 | 第24页 |
| 3．10 低温胁迫时谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性的变化 | 第24-26页 |
| 3．10．1 酶液的提取 | 第24页 |
| 3．10．2 标准曲线的绘制 | 第24-25页 |
| 3．10．3 GSH-Px活性的测定 | 第25-26页 |
| 4 实验结果与分析 | 第26-43页 |
| 4．1 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞膜流动性的变化 | 第26-29页 |
| 4．1．1 低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞的P、η、LFU及细胞膜流动性 | 第26页 |
| 4．1．2 低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞的P、η、LFU及细胞膜流动性 | 第26-27页 |
| 4．1．3 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞膜流动性的变化曲线的比较 | 第27-29页 |
| 4．2 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞内钙离子水平的变化 | 第29-30页 |
| 4．2．1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞钙离子水平 | 第29页 |
| 4．2．2 8℃低温胁迫时淡水白鲳细胞内钙离子水平 | 第29-30页 |
| 4．2．3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞钙离子水平变化曲线的比较 | 第30页 |
| 4．3 低温胁迫时ATP酶活力变化 | 第30-33页 |
| 4．3．1 标准曲线 | 第30-31页 |
| 4．3．2 ATP酶活性 | 第31-33页 |
| 4．3．2．1 2-3℃低温胁迫时草鱼2C-7901细胞ATP酶活力 | 第31-32页 |
| 4．3．2．2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞ATP酶活力 | 第32页 |
| 4．3．2．3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞ATP酶活力变化的比较 | 第32-33页 |
| 4．4 低温胁迫时MDA含量的变化 | 第33-34页 |
| 4．4．1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞内MDA含量 | 第33页 |
| 4．4．2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞内MDA含量 | 第33-34页 |
| 4．4．3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞MDA含量变化曲线的比较 | 第34页 |
| 4．5 低温胁迫时超氧阴离子自由基（O_2~-）水平的变化 | 第34-36页 |
| 4．5．1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞内O_2~-水平 | 第34-35页 |
| 4．5．2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞内O_2~-水平 | 第35页 |
| 4．5．3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞O_2~-水平变化曲线的比较 | 第35-36页 |
| 4．6 低温胁迫时SOD活性的变化 | 第36-38页 |
| 4．6．1 邻苯三酚自氧化时前4分钟（为线性关系）O．D_（325nm）值 | 第36页 |
| 4．6．2 邻苯三酚自氧化速率标准曲线 | 第36-37页 |
| 4．6．3 低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD对邻苯三酚自氧化的抑制曲线 | 第37页 |
| 4．6．4 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD酶活力 | 第37-38页 |
| 4．6．5 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD酶活力的变化 | 第38页 |
| 4．7 低温胁迫时过氧化氢酶（CAT）活性的变化 | 第38-40页 |
| 4．7．1 不同时间低温处理组OD_（570nm）值以及K值 | 第38-39页 |
| 4．7．2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞CAT酶活力 | 第39页 |
| 4．7．3 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞CAT酶活力的变化 | 第39-40页 |
| 4．8 低温胁迫时过氧化物酶（POD）活性的变化 | 第40-41页 |
| 4．8．1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞POD酶活力 | 第40页 |
| 4．8．2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞POD酶活力的变化 | 第40-41页 |
| 4．9 低温胁迫时谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性的变化 | 第41-43页 |
| 4．9．1 GSH的标准曲线 | 第41-42页 |
| 4．9．2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞GSH-Px酶活力 | 第42页 |
| 4．9．3 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞GSH-Px酶活力的变化 | 第42-43页 |
| 5 讨论 | 第43-55页 |
| 5．1 细胞膜与细胞耐寒性的关系 | 第43-44页 |
| 5．2 钙离子与细胞耐寒性的关系 | 第44-46页 |
| 5．3 寒害与ATP酶的关系 | 第46-48页 |
| 5．4 MDA与细胞耐寒性的关系 | 第48-49页 |
| 5．5 抗氧化酶活性与细胞耐寒的关系 | 第49-55页 |
| 5．5．1 自由基学说 | 第49-51页 |
| 5．5．2 超氧阴离子自由基（O_2~-）、超氧化物岐化酶与细胞耐寒性关系 | 第51-52页 |
| 5．5．3 过氧化氢酶（CAT）、过氧化物酶（POD）与细胞耐寒性的关系 | 第52-53页 |
| 5．5．4 谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）与细胞耐寒性的关系 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 综述： 动物耐寒机理研究进展 | 第62-80页 |
