| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩写词表 | 第15-17页 |
| 第1章 综述 | 第17-35页 |
| 1.1 神经系统的免疫调节 | 第17-19页 |
| 1.1.1 神经系统和免疫系统的双向作用 | 第17-18页 |
| 1.1.2 神经免疫调节在神经系统免疫-变性病中起重要作用 | 第18-19页 |
| 1.2 小胶质细胞的免疫功能与作用 | 第19-28页 |
| 1.2.1 小胶质细胞概述及其生理功能 | 第19-21页 |
| 1.2.2 神经免疫炎性疾病中的小胶质细胞的激活 | 第21-23页 |
| 1.2.3 小胶质细胞功能的两面性 | 第23-26页 |
| 1.2.4 小胶质细胞的可塑性及治疗靶点 | 第26-28页 |
| 1.3 海人藻酸（KA）建立的神经兴奋性毒性损伤及神经退行性病变模型 | 第28-35页 |
| 1.3.1 兴奋性毒性在神经退行性变的重要机制 | 第28-29页 |
| 1.3.2 海人藻酸建立神经毒性模型 | 第29-35页 |
| 第2章 KA 诱导神经毒性损伤模型的建立及其机制的研究 | 第35-55页 |
| 2.1 前言 | 第35-36页 |
| 2.2 材料与方法 | 第36-49页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第36页 |
| 2.2.2 实验材料及试剂 | 第36-38页 |
| 2.2.3 主要试剂配制 | 第38-40页 |
| 2.2.4 实验动物 | 第40-41页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第41-49页 |
| 2.2.6 数据显示和统计 | 第49页 |
| 2.3 实验结果 | 第49-53页 |
| 2.3.1 海马神经元原代培养后细胞形态学观察 | 第49-50页 |
| 2.3.2 KA 可对原代培养的海马神经元造成兴奋性毒性损伤 | 第50-52页 |
| 2.3.3 KA 刺激后海马神经元中 caspase 3 和 NFκB 蛋白的表达 | 第52-53页 |
| 2.4 讨论 | 第53-55页 |
| 第3章 小胶质细胞原代培养及诱导分化的实验研究 | 第55-73页 |
| 3.1 前言 | 第55页 |
| 3.2 材料与方法 | 第55-64页 |
| 3.2.1 主要仪器（相同部分见第 2 章） | 第55-56页 |
| 3.2.2 实验材料及试剂（相同部分见第 2 章） | 第56-57页 |
| 3.2.3 主要试剂配制 | 第57-58页 |
| 3.2.4 实验动物 | 第58页 |
| 3.2.5 实验方法 | 第58-64页 |
| 3.2.6 数据显示和统计 | 第64页 |
| 3.3 实验结果 | 第64-70页 |
| 3.3.1 抗 CD11b 磁珠阳性筛选可得到高阳性率的小胶质细胞 | 第64-65页 |
| 3.3.2 小胶质细胞的诱导前后的形态学观察 | 第65-66页 |
| 3.3.3 LPS 和 IFN-γ 联合刺激可诱导 M1 分化 | 第66-67页 |
| 3.3.4 IL-4、IL-10 和 TGF-β 联合刺激可诱导 M2 分化 | 第67-69页 |
| 3.3.5 诱导分化后的小胶质细胞可分泌多种促炎或抗炎的细胞因子 | 第69-70页 |
| 3.4 讨论 | 第70-73页 |
| 第4章 诱导分化的小胶质细胞对 KA 神经毒性的作用研究 | 第73-85页 |
| 4.1 前言 | 第73页 |
| 4.2 材料与方法 | 第73-74页 |
| 4.2.1 主要仪器、实验材料及试剂 | 第73页 |
| 4.2.2 主要试剂配制 | 第73-74页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第74页 |
| 4.2.4 数据显示和统计 | 第74页 |
| 4.3 结果 | 第74-80页 |
| 4.3.1 海马神经元与小胶质细胞体外共培养模型的建立 | 第74-77页 |
| 4.3.2 分化后的小胶质细胞与神经元共培养对 KA 神经毒性的影响 | 第77-79页 |
| 4.3.3 海马神经元与小胶质细胞共培养后caspase 3 和 NFκB 蛋白的表达 | 第79-80页 |
| 4.4 讨论 | 第80-85页 |
| 第5章 结论 | 第85-87页 |
| 参考文献 | 第87-99页 |
| 作者简介及在攻读博士期间所取得的科研成果 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
