摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
第一章 文献综述 | 第7-27页 |
1.1 微丝细胞骨架 | 第7页 |
1.2 ADF/Cofilin蛋白 | 第7-17页 |
1.2.1 ADF/Cofilin蛋白的功能 | 第7-9页 |
1.2.2 ADF/Cofilin蛋白功能的调控 | 第9-10页 |
1.2.3 ADF/Cofilin蛋白结构 | 第10-17页 |
1.3 拟南芥ADF家族研究进展 | 第17-22页 |
1.3.1 拟南芥ADF家族的体内研究进展 | 第17-19页 |
1.3.2 拟南芥ADF家族的体外研究进展 | 第19-22页 |
1.4 其他植物ADF研究进展 | 第22-25页 |
1.5 本研究目的及意义 | 第25-27页 |
第二章 实验材料和方法 | 第27-30页 |
2.1 实验材料 | 第27页 |
2.1.1 菌株、载体及工具酶 | 第27页 |
2.1.2 植物材料 | 第27页 |
2.1.3 试剂、药品 | 第27页 |
2.1.4 缓冲液 | 第27页 |
2.2 实验方法 | 第27-30页 |
2.2.1 拟南芥的种植和小立碗藓的培养 | 第27-28页 |
2.2.2 拟南芥总与小立碗藓RNA的提取 | 第28页 |
2.2.3 RT-PCR | 第28-29页 |
2.2.4 载体构建 | 第29-30页 |
第三章 结果与分析 | 第30-45页 |
3.1 拟南芥ADF家族和小立碗藓ADF进化树及氨基酸保守性分析 | 第30-32页 |
3.2 拟南芥ADF家族和小立碗藓ADF可预测理化性质的统计与比较 | 第32页 |
3.3 拟南芥ADF家族和小立碗藓ADF CDS的PCR扩增 | 第32-34页 |
3.4 PCR产物与pMD18-T载体连接 | 第34页 |
3.5 表达载体的连接 | 第34-35页 |
3.6 ADF蛋白的表达检测 | 第35-36页 |
3.7 AtADF10的纯化及生化特性验证 | 第36-38页 |
3.7.1 AtADF10的纯化 | 第36页 |
3.7.2 AtADF10剪切并且不成束F-actin | 第36-38页 |
3.8 AtADF11的纯化及生化特性验证 | 第38-40页 |
3.8.1 AtADF11的纯化 | 第38页 |
3.8.2 AtADF11成束并且不剪切F-actin | 第38-40页 |
3.9 PpADF的纯化及生化特性验证 | 第40-43页 |
3.9.1 PpADF的纯化 | 第40页 |
3.9.2 PpADF剪切F-actin活性受到pH和Ca~(2+)调控且不具成束功能 | 第40-43页 |
3.10 讨论 | 第43-45页 |
第四章 结论与展望 | 第45-46页 |
致谢 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-51页 |
研究生期间发表文 | 第51页 |