| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-6页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 第一部分 构建大鼠周围神经损伤模型 | 第11-25页 |
| 材料与方法 | 第11-18页 |
| 1 材料 | 第11-12页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第11页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第11-12页 |
| 1.3 实验动物 | 第12页 |
| 2 方法 | 第12-17页 |
| 2.1 建立周围神经离断模型 | 第12-13页 |
| 2.2 免疫荧光法检测CD68的蛋白水平 | 第13页 |
| 2.3 实时荧光定量 PCR 检测 IL-1βm RNA 和 MCP-1m RNA 的水平 | 第13-15页 |
| 2.4 神经组织的标本制备及病理学观察 | 第15-16页 |
| 2.5 坐骨神经功能指数（SFI） | 第16-17页 |
| 3 统计学分析 | 第17-18页 |
| 结果 | 第18-22页 |
| 1 大鼠一般状况 | 第18页 |
| 2 大鼠坐骨神经组织CD68的蛋白水平 | 第18页 |
| 3 大鼠坐骨神经组织 IL-1βm RNA 和 MCP-1m RNA 的水平 | 第18-19页 |
| 4 HE染色显示模型组大鼠神经损伤明显 | 第19页 |
| 5 LFB染色显示模型组大鼠坐骨经远端脱髓鞘 | 第19-20页 |
| 6 大鼠坐骨神经功能指数 | 第20-22页 |
| 讨论 | 第22-25页 |
| 第二部分TLR4信号通路参与周围神经损伤后的瓦勒变性 | 第25-39页 |
| 材料与方法 | 第25-29页 |
| 1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第25-26页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第26页 |
| 1.3 实验动物 | 第26页 |
| 2 方法 | 第26-28页 |
| 2.1 周围神经离断模型制备 | 第26页 |
| 2.2 动物分组 | 第26-27页 |
| 2.3 实时荧光定量 PCR 检测 TRIFm RNA、IL-1βm RNA 和 MCP-1m RNA的水平 | 第27页 |
| 2.4 免疫组化法检测 TRIF 和 GAP-43 的蛋白表达 | 第27页 |
| 2.5 免疫荧光法检测CD68和iba1的蛋白水平 | 第27-28页 |
| 2.6 LFB，HE染色 | 第28页 |
| 2.7 坐骨神经功能指数 | 第28页 |
| 3 统计学分析 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-36页 |
| 1 大鼠一般状况 | 第29页 |
| 2 大鼠坐骨神经组织TRIFmRNA和TRIF蛋白的水平 | 第29-30页 |
| 3 大鼠坐骨神经组织 IL-1βm RNA 和 MCP-1m RNA 的水平 | 第30-31页 |
| 4 大鼠坐骨神经组织iba1和CD68的蛋白水平 | 第31-32页 |
| 5 大鼠坐骨神经组织LFB染色 | 第32-33页 |
| 6 大鼠坐骨神经组织HE染色 | 第33-34页 |
| 7 大鼠坐骨神经组织 GAP-43 的蛋白水平 | 第34-35页 |
| 8 大鼠坐骨神经功能指数 | 第35-36页 |
| 讨论 | 第36-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 综述 | 第44-57页 |
| 综述参考文献 | 第51-57页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
