| 中文摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 中文文摘 | 第4-8页 |
| 目录 | 第8-12页 |
| 绪论 | 第12-24页 |
| 1 炎性痛 | 第12-15页 |
| 1.1 炎性痛及其特点 | 第12-13页 |
| 1.2 炎性痛模型—角叉菜胶模型 | 第13页 |
| 1.3 痛觉传导通路 | 第13-14页 |
| 1.4 痛觉过敏(hyperalgesia) | 第14页 |
| 1.5 痛觉减退(hypoalgesia) | 第14-15页 |
| 2 前列腺素及环氧合酶 | 第15-19页 |
| 2.1 前列腺素E | 第15-16页 |
| 2.2 前列腺素E受体 | 第16-17页 |
| 2.3 前列腺素合成的限速酶 | 第17页 |
| 2.4 COX-2依赖性的PGE_2在疼痛中的作用 | 第17-18页 |
| 2.5 COX-1依赖性的PGE_2在疼痛中的作用 | 第18-19页 |
| 3 阿片受体与疼痛 | 第19页 |
| 4 CGRP在炎性痛中的作用 | 第19-21页 |
| 5 IL-1β在炎性痛中的作用 | 第21-22页 |
| 6 本课题的立题背景、研究目的和意义 | 第22-24页 |
| 第一章 阻断前列腺素合成对痛觉减退的炎症大鼠中μ-阿片受体表达的影响 | 第24-40页 |
| 1.1 前言 | 第24页 |
| 1.2 实验材料 | 第24-26页 |
| 1.2.1 实验动物 | 第24页 |
| 1.2.2 实验仪器 | 第24-25页 |
| 1.2.3 实验药品 | 第25页 |
| 1.2.4 主要试剂及药品配制 | 第25-26页 |
| 1.3 实验方法 | 第26-32页 |
| 1.3.1 动物饲养及基础训练 | 第26页 |
| 1.3.2 实验分组及行为学测试 | 第26-27页 |
| 1.3.3 样本采集 | 第27页 |
| 1.3.4 动物组织总RNA提取及相关检测 | 第27-29页 |
| 1.3.5 逆转录反应(cDNA第一链合成反应) | 第29-30页 |
| 1.3.6 qRT-PCR技术检测实验样品mRNA含量 | 第30-32页 |
| 1.4 统计分析 | 第32页 |
| 1.5 实验结果 | 第32-37页 |
| 1.5.1 RNA完整性检测 | 第32-33页 |
| 1.5.2 引物特异性结果 | 第33-34页 |
| 1.5.3 大鼠足底皮下组织中μ-阿片受体mRNA的含量 | 第34-35页 |
| 1.5.4 大鼠DRG中μ-阿片受体mRNA的含量 | 第35-36页 |
| 1.5.5 脊髓中μ-阿片受体mRNA的含量 | 第36-37页 |
| 1.6 讨论 | 第37-40页 |
| 第二章 阻断前列腺素合成对痛觉减退的炎症大鼠中CGRP表达的影响 | 第40-50页 |
| 2.1 前言 | 第40页 |
| 2.2 实验材料 | 第40页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第40页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第40页 |
| 2.2.3 实验药品 | 第40页 |
| 2.2.4 主要试剂及药品配制 | 第40页 |
| 2.3 实验方法 | 第40-43页 |
| 2.3.1 动物饲养及基础训练 | 第41页 |
| 2.3.2 实验分组及行为学测试 | 第41页 |
| 2.3.3 样本采集 | 第41页 |
| 2.3.4 动物组织总RNA提取及相关检测 | 第41页 |
| 2.3.5 逆转录反应(cDNA第一链合成反应) | 第41页 |
| 2.3.6 qRT-PCR技术检测实验样品中CGRP mRNA表达量 | 第41-43页 |
| 2.4 统计分析 | 第43页 |
| 2.5 实验结果 | 第43-48页 |
| 2.5.1 RNA完整性结果检测 | 第43-44页 |
| 2.5.2 引物特异性结果 | 第44-45页 |
| 2.5.3 大鼠足底皮下组织中CGRP mRNA的含量 | 第45-46页 |
| 2.5.4 大鼠DRG中CGRP mRNA的含量 | 第46-47页 |
| 2.5.5 大鼠脊髓中CGRP mRNA的含量 | 第47-48页 |
| 2.6 讨论 | 第48-50页 |
| 第三章 阻断前列腺素合成对痛觉减退炎症大鼠中IL-1β表达的影响 | 第50-60页 |
| 3.1 前言 | 第50页 |
| 3.2 实验材料 | 第50页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第50页 |
| 3.2.2 主要实验仪器 | 第50页 |
| 3.2.3 实验药品 | 第50页 |
| 3.2.4 主要试剂及药品配制 | 第50页 |
| 3.3 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.3.1 动物饲养及基础训练 | 第51页 |
| 3.3.2 实验分组及行为学测试 | 第51页 |
| 3.3.3 样本采集 | 第51页 |
| 3.3.4 动物组织总RNA提取及相关检测 | 第51页 |
| 3.3.5 逆转录反应(cDNA第一链合成反应) | 第51页 |
| 3.3.6 qRT-PCR技术检测实验样品中IL-1β mRNA表达量 | 第51-53页 |
| 3.4 统计分析 | 第53页 |
| 3.5 实验结果 | 第53-58页 |
| 3.5.1 RNA完整性结果检测 | 第53-54页 |
| 3.5.2 引物特异性结果 | 第54-55页 |
| 3.5.3 大鼠足底皮下组织中IL-1β mRNA的含量 | 第55-56页 |
| 3.5.4 大鼠DRG中IL-1β mRNA的含量 | 第56-57页 |
| 3.5.5 大鼠脊髓中IL-1β mRNA的含量 | 第57-58页 |
| 3.6 讨论 | 第58-60页 |
| 第四章 结论 | 第60-62页 |
| 附录1 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
