| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-30页 |
| 1.1 NO_x的排放现状及减排紧迫性 | 第11-14页 |
| 1.2 NO_x治理技术的研究现状 | 第14-23页 |
| 1.2.1 气相反应脱硝技术 | 第14-17页 |
| 1.2.2 吸附法 | 第17-18页 |
| 1.2.3 等离子体法 | 第18-19页 |
| 1.2.4 吸收法 | 第19-20页 |
| 1.2.5 生物法 | 第20-22页 |
| 1.2.6 络合吸收-生物还原法 | 第22-23页 |
| 1.3 N_2O危害及研究现状 | 第23-25页 |
| 1.4 变性梯度凝胶电泳Bio-DGGE的原理和应用 | 第25-28页 |
| 1.4.1 原理 | 第25-26页 |
| 1.4.2 应用 | 第26-28页 |
| 1.5 课题研究意义及研究内容 | 第28-30页 |
| 1.5.1 课题研究意义与目的 | 第28页 |
| 1.5.2 课题研究内容 | 第28页 |
| 1.5.3 课题创新之处 | 第28-29页 |
| 1.5.4 课题来源 | 第29-30页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第30-38页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第30-32页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.2 分析测试方法 | 第32-33页 |
| 2.2.1 F~Ⅱ(EDTA)-NO浓度测定方法 | 第32页 |
| 2.2.2 N_2O的测定 | 第32页 |
| 2.2.3 污泥生物量测定方法 | 第32-33页 |
| 2.3 污泥驯化与培养 | 第33-34页 |
| 2.3.1 污泥来源 | 第33页 |
| 2.3.2 基础营养液配方 | 第33页 |
| 2.3.3 污泥的驯化和培养实验 | 第33页 |
| 2.3.4 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO溶液 | 第33-34页 |
| 2.3.5 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO的生物还原实验 | 第34页 |
| 2.4 微生物群落结构与优势菌属研究 | 第34-38页 |
| 2.4.1 DNA提取 | 第34-35页 |
| 2.4.2 PCR扩增 | 第35-36页 |
| 2.4.3 DGGE分析 | 第36-37页 |
| 2.4.4 割胶回收DNA片段和PCR扩增 | 第37页 |
| 2.4.5 16S rDNA测序及同源性比较 | 第37-38页 |
| 第三章 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO的生物还原研究 | 第38-56页 |
| 3.1 污泥驯化 | 第38-40页 |
| 3.1.1 驯化第一阶段 | 第38-39页 |
| 3.1.2 驯化第二阶段 | 第39-40页 |
| 3.2 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原过程中污泥生物量变化研究 | 第40-41页 |
| 3.2.1 污泥生物量随时间变化规律 | 第41页 |
| 3.3 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物降解速率研究 | 第41-49页 |
| 3.3.1 碳源对还原速率V_(max)的影响 | 第42-45页 |
| 3.3.2 pH对还原速率V_(max)的影响 | 第45-47页 |
| 3.3.3 温度对还原速率V_(max)的影响 | 第47-49页 |
| 3.4 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原中N_2O产生途径研究 | 第49-54页 |
| 3.4.1 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原过程中N_2O变化图 | 第50-51页 |
| 3.4.2 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原过程中氮素变化 | 第51-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-56页 |
| 第四章 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原过程中N_2O的控逸研究 | 第56-68页 |
| 4.1 碳源对N_2O累积及转化率的影响 | 第56-58页 |
| 4.2 C/N对N_2O累积及转化率的影响 | 第58-59页 |
| 4.3 pH值对N_2O累积及转化率的影响 | 第59-61页 |
| 4.4 温度对N_2O累积及转化率的影响 | 第61-63页 |
| 4.5 F~ⅡEDTA浓度对N_2O累积及转化率的影响 | 第63-64页 |
| 4.6 SO_3~(2-)对N_2O累积及转化率的影响 | 第64-66页 |
| 4.7 本章小结 | 第66-68页 |
| 第五章 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原过程中微生物群落结构鉴定与分析 | 第68-87页 |
| 5.1 污泥驯化稳定期间微生物群落结构研究 | 第68-74页 |
| 5.1.1 不同驯化时间段下样品的采集 | 第68页 |
| 5.1.2 样品基因组DNA提取和PCR扩增 | 第68-69页 |
| 5.1.3 样品DGGE分析 | 第69-71页 |
| 5.1.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析 | 第71-74页 |
| 5.2 不同碳源条件下微生物群落结构变化 | 第74-79页 |
| 5.2.1 不同碳源条件下的污泥样品采集 | 第74-75页 |
| 5.2.2 样品基因组DNA的提取和PCR扩增 | 第75-76页 |
| 5.2.3 样品Bio-DGGE条带分析 | 第76-78页 |
| 5.2.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析 | 第78-79页 |
| 5.3 不同C/N比条件下微生物群落结构变化 | 第79-83页 |
| 5.3.1 不同C/N条件下样品采集 | 第79页 |
| 5.3.2 样品基因组DNA的提取和PCR扩增 | 第79-80页 |
| 5.3.3 样品Bio-DGGE条带分析 | 第80-82页 |
| 5.3.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析 | 第82-83页 |
| 5.4 不同pH值条件下微生物群落结构变化 | 第83-87页 |
| 5.4.1 不同pH条件下样品采集 | 第83页 |
| 5.4.2 样品基因组DNA的提取和PCR扩增 | 第83-84页 |
| 5.4.3 样品Bio-DGGE条带分析 | 第84-86页 |
| 5.4.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析 | 第86-87页 |
| 第六章 结论与建议 | 第87-89页 |
| 6.1 结论 | 第87-88页 |
| 6.2 建议和展望 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第98页 |
