中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
前言 | 第14-19页 |
研究现状、成果 | 第14-17页 |
研究目的、方法 | 第17-19页 |
一、PKM2在乳腺癌中的表达及与EGFR和HER2表达的相关性 | 第19-38页 |
1.1 对象和方法 | 第19-30页 |
1.1.1 实验标本 | 第19页 |
1.1.2 细胞株 | 第19页 |
1.1.3 主要试剂 | 第19-21页 |
1.1.4 主要试剂配制 | 第21-22页 |
1.1.5 主要仪器 | 第22-23页 |
1.1.6 方法 | 第23-30页 |
1.1.7 统计学分析 | 第30页 |
1.2 结果 | 第30-36页 |
1.2.1 乳腺癌组织PKM2的表达 | 第30-32页 |
1.2.2 乳腺癌细胞系PKM2蛋白的表达 | 第32-34页 |
1.2.3 乳腺癌组织PKM2表达及与EGFR和HER2表达的相关性 | 第34-35页 |
1.2.4 EGFR基因沉默对乳腺癌细胞系PKM2表达的影响 | 第35页 |
1.2.5 HER2基因沉默对乳腺癌细胞系PKM2表达的影响 | 第35-36页 |
1.3 讨论 | 第36-37页 |
1.4 小结 | 第37-38页 |
二、拉帕替尼对乳腺癌PKM2表达的影响 | 第38-53页 |
2.1 对象和方法 | 第38-47页 |
2.1.1 实验对象 | 第38页 |
2.1.2 主要试剂 | 第38-40页 |
2.1.3 细胞株 | 第40页 |
2.1.4 主要试剂配制 | 第40-41页 |
2.1.5 引物设计 | 第41页 |
2.1.6 主要仪器设备 | 第41-42页 |
2.1.7 方法 | 第42-47页 |
2.1.8 统计学分析 | 第47页 |
2.2 结果 | 第47-51页 |
2.2.1 拉帕替尼和EGF工作浓度的确定 | 第47-48页 |
2.2.2 拉帕替尼对乳腺癌细胞系PKM2表达的影响 | 第48-50页 |
2.2.3 拉帕替尼对乳腺癌病人血清中PKM2水平的影响 | 第50-51页 |
2.3 讨论 | 第51-52页 |
2.4 小结 | 第52-53页 |
三、拉帕替尼通过影响PKM2表达对乳腺癌细胞增殖的作用 | 第53-64页 |
3.1 对象和方法 | 第53-60页 |
3.1.1 实验对象 | 第53页 |
3.1.2 主要试剂 | 第53页 |
3.1.3 细胞株 | 第53页 |
3.1.4 培养基的制备 | 第53-54页 |
3.1.5 PCR引物 | 第54页 |
3.1.6 主要仪器设备 | 第54-55页 |
3.1.7 方法 | 第55-59页 |
3.1.8 统计学分析 | 第59-60页 |
3.2 结果 | 第60-62页 |
3.2.1 拉帕替尼对乳腺癌细胞增殖的影响 | 第60页 |
3.2.2 稳定过表达PKM2的MDA-MB-231和SK-BR-3 细胞的Western blot鉴定 | 第60页 |
3.2.3 过表达PKM2的乳腺癌细胞系在拉帕替尼作用下增殖曲线的测定 | 第60-62页 |
3.3 讨论 | 第62-63页 |
3.4 小结 | 第63-64页 |
四、拉帕替尼影响PKM2表达对Stat3表达和磷酸化的作用 | 第64-73页 |
4.1 对象和方法 | 第64-69页 |
4.1.1 主要试剂 | 第64-65页 |
4.1.2 细胞株 | 第65页 |
4.1.3 主要试剂配制 | 第65-66页 |
4.1.4 主要仪器设备 | 第66-67页 |
4.1.5 方法 | 第67-69页 |
4.2 结果 | 第69-71页 |
4.2.1 MDA-MB-231和SK-BR-3 乳腺癌细胞系中下调PKM2蛋白表达后对与细胞增殖有关的信号通路因子Stat3的影响 | 第69页 |
4.2.2 拉帕替尼通过影响PKM2的表达对与乳腺癌细胞增殖有关的信号通路因子Stat3的影响 | 第69-71页 |
4.3 讨论 | 第71-72页 |
4.4 小结 | 第72-73页 |
结论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-78页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第78-79页 |
综述 M2型丙酮酸激酶在肿瘤细胞中的多面性 | 第79-87页 |
综述参考文献 | 第83-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
个人简历 | 第88页 |