| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 材料与方法 | 第15-22页 |
| 1.1 材料 | 第15-16页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.1.2 实验材料 | 第15页 |
| 1.1.3 主要实验设备 | 第15-16页 |
| 1.2 大鼠SCs的分离培养纯化及鉴定 | 第16-17页 |
| 1.2.1 大鼠SCs的分离培养及纯化 | 第16页 |
| 1.2.2 大鼠SCs的S-100蛋白免疫荧光鉴定 | 第16-17页 |
| 1.3 大鼠ADSCs的分离培养及鉴定 | 第17页 |
| 1.3.1 大鼠ADSCs的分离培养 | 第17页 |
| 1.3.2 大鼠ADSCs行流式细胞仪检测 | 第17页 |
| 1.4 SCs-ADSCs共培养系统的建立、观察及鉴定 | 第17-18页 |
| 1.4.1 SCs-ADSCs共培养系统的建立 | 第17页 |
| 1.4.2 SCs-ADSCs共培养观察及鉴定 | 第17-18页 |
| 1.5 丝素/胶原蛋白神经支架的制备 | 第18-19页 |
| 1.5.1 制备丝素蛋白 | 第18页 |
| 1.5.2 制备胶原蛋白 | 第18-19页 |
| 1.5.3 丝素/胶原蛋白支架的制备 | 第19页 |
| 1.6 组织工程化神经的构建及其性能检测 | 第19页 |
| 1.6.1 组织工程化神经的构建 | 第19页 |
| 1.6.2 扫描电镜观察 | 第19页 |
| 1.6.3 力学性能检测 | 第19页 |
| 1.7 动物实验分组及造模 | 第19-20页 |
| 1.7.1 实验动物分组 | 第19-20页 |
| 1.7.2 实验动物坐骨神经缺损模型的建立 | 第20页 |
| 1.8 实验动物术后神经电生理及形态学分析 | 第20-21页 |
| 1.8.1 电生理检测 | 第20页 |
| 1.8.2 再生神经大体观察 | 第20页 |
| 1.8.3 透射电镜和光镜观察 | 第20-21页 |
| 1.9 统计学分析 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-29页 |
| 2.1 大鼠SCs的培养及鉴定 | 第22页 |
| 2.2 大鼠ADSCs培养与鉴定 | 第22-23页 |
| 2.3 SCs-ADSCs共培养观察及鉴定 | 第23-25页 |
| 2.4 组织工程化神经的构建及其性能检测 | 第25页 |
| 2.5 实验动物术后神经电生理及形态学分析 | 第25-29页 |
| 2.5.1 电生理检测 | 第25-26页 |
| 2.5.2 实验动物及再生神经大体观察 | 第26-27页 |
| 2.5.3 形态学分析 | 第27-29页 |
| 讨论 | 第29-37页 |
| 3.1 种子细胞的来源、分离及其共培养 | 第29-31页 |
| 3.2 支架材料的选择及其性能 | 第31-33页 |
| 3.2.1 支架材料的选择 | 第31-32页 |
| 3.2.2 支架的理化性能 | 第32-33页 |
| 3.3 实验动物神经再生效果 | 第33-35页 |
| 3.3.1 电生理学评价 | 第33-34页 |
| 3.3.2 实验动物及其再生神经大体观察 | 第34页 |
| 3.3.3 形态学分析 | 第34-35页 |
| 3.4 新型组织工程化神经的构建及其意义 | 第35-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-43页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第43-45页 |
| 综述 周围神经损伤修复技术及其再生机制研究进展 | 第45-59页 |
| 综述参考文献 | 第54-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 个人简历 | 第60页 |