摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 前言 | 第10-21页 |
1. 食用菌多糖的研究背景 | 第10-13页 |
1.1 食用菌多糖活性研究 | 第10-13页 |
2. 金福菇研究进展 | 第13-14页 |
3. 衰老相关背景 | 第14-19页 |
3.1 常用衰老动物模型 | 第15-17页 |
3.2 衰老细胞的特征 | 第17-19页 |
4. 主要研究目的与内容 | 第19-21页 |
第二章 金福菇多糖对D-半乳糖所致亚急性衰老小鼠的保护作用 | 第21-35页 |
1. 实验材料与仪器 | 第21-22页 |
1.1 实验动物 | 第21页 |
1.2 药品与试剂 | 第21页 |
1.3 实验仪器 | 第21-22页 |
2. 实验方法 | 第22-29页 |
2.1 药物的配置 | 第22页 |
2.2 实验小鼠分组及给药 | 第22-23页 |
2.2.1 小鼠分组 | 第22页 |
2.2.2 给药 | 第22页 |
2.2.3 组织处理及准备 | 第22-23页 |
2.3 实验指标的测定 | 第23-28页 |
2.3.1 组织蛋白含量检测 | 第23-24页 |
2.3.2 SOD含量测定 | 第24-25页 |
2.3.3 CAT活性检测 | 第25-26页 |
2.3.4 MDA含量检测 | 第26-27页 |
2.3.5 皮肤经脯氨酸含量的测定 | 第27-28页 |
2.4 统计分析 | 第28-29页 |
3. 结果与分析 | 第29-33页 |
3.1 小鼠外观特征观察 | 第29页 |
3.2 小鼠皮肤羟脯氨酸含量的变化 | 第29-30页 |
3.3 小鼠皮肤抗氧化能力的变化 | 第30-31页 |
3.4 小鼠血清抗氧化能力的变化 | 第31-32页 |
3.5 小鼠肝脏组织中抗氧化能力的变化 | 第32-33页 |
3.6 小鼠心脏组织的抗氧化能力变化 | 第33页 |
4. 讨论 | 第33-35页 |
第三章 金福菇多糖TLH-3对t-BHP诱导的HELF细胞衰老的保护作用 | 第35-37页 |
1. 实验材料与仪器 | 第35页 |
1.1 实验材料 | 第35页 |
1.2 实验仪器 | 第35页 |
2. 实验方法 | 第35-37页 |
2.1 药物及相关试剂的配置 | 第35-36页 |
2.2 实验方法 | 第36-37页 |
2.2.1 细胞培养 | 第36页 |
2.2.2 t-BHP的诱导 | 第36-37页 |
第四章 金福菇多糖TLH-3对HELF细胞氧化损伤的保护作用 | 第37-48页 |
1. 检测方法与指标 | 第37-40页 |
1.1 MTT法检测t-BHP对HELF细胞存活率的影响 | 第37页 |
1.2 MTT检测TLH-3对t-BHP诱导下HELF细胞存活率的影响 | 第37页 |
1.3 Hoechst 33342检测 | 第37页 |
1.4 细胞周期检测 | 第37-38页 |
1.5 Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测 | 第38页 |
1.6 β-半乳糖苷酶染色 | 第38-40页 |
2. 结果与分析 | 第40-46页 |
2.1 t-BHP作用下HELF细胞的活性变化 | 第40-41页 |
2.2 TLH-3对t-BHP诱导的细胞衰老模型细胞的保护作用 | 第41-42页 |
2.3 Hoechst 33342染色 | 第42-43页 |
2.4 TLH-3对HELF细胞生长周期的影响 | 第43-44页 |
2.5 TLH-3对HELF细胞凋亡的影响 | 第44-45页 |
2.6 β-半乳糖苷酶染色 | 第45-46页 |
3. 讨论 | 第46-48页 |
第五章 金福菇多糖TLH-3对HELF细胞氧化水平的影响 | 第48-53页 |
1. 检测方法与指标 | 第48-49页 |
1.1 免疫荧光检测细胞内ROS含量 | 第48页 |
1.2 酶学法检测细胞培养上清液SOD及MDA含量 | 第48-49页 |
2. 结果与分析 | 第49-52页 |
2.1 HELF细胞ROS水平检测 | 第49-51页 |
2.2 细胞内T-SOD、MDA含量测定 | 第51-52页 |
3. 讨论 | 第52-53页 |
结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第61页 |