| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 一、文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 植物MADS-box基因的研究进展 | 第10-17页 |
| 1.1.1 MADS-box蛋白的结构 | 第10页 |
| 1.1.2 MADS-box基因家族的分类 | 第10-11页 |
| 1.1.3 MADS-box基因功能的研究进展 | 第11-17页 |
| 1.2 生物信息学和植物基因组学的研究概况 | 第17-19页 |
| 1.2.1 生物信息学 | 第17-18页 |
| 1.2.2 植物基因组学 | 第18-19页 |
| 1.3 甜瓜简介 | 第19页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 二、材料与方法 | 第20-33页 |
| 2.1 材料和试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第20页 |
| 2.1.2 菌种和质粒 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-33页 |
| 2.2.1 甜瓜MADS-box基因家族成员的鉴定 | 第21页 |
| 2.2.2 染色体定位与外显子-内含子结构分析 | 第21页 |
| 2.2.3 序列比对及系统发生分析 | 第21-22页 |
| 2.2.4 保守基序的分析 | 第22页 |
| 2.2.5 MADS-box基因家族成员的表达特性分析 | 第22-27页 |
| 2.2.6 CmMADS02和CmMADS26基因全长cDNA的克隆 | 第27-28页 |
| 2.2.7 超表达载体的构建 | 第28-29页 |
| 2.2.8 RNAi载体的构建 | 第29-31页 |
| 2.2.9 甜瓜果实中的瞬时表达分析 | 第31-32页 |
| 2.2.10 甜瓜的遗传转化 | 第32-33页 |
| 三、结果与分析 | 第33-59页 |
| 3.1 甜瓜MADS-box基因的鉴定、注释及定位 | 第33-38页 |
| 3.2 染色体定位与外显子-内含子结构分析 | 第38-40页 |
| 3.3 系统发生分析 | 第40-43页 |
| 3.4 保守基序分析 | 第43页 |
| 3.5 表达特性分析 | 第43-47页 |
| 3.6 CmMADS02和CmMADS26基因全长cDNA的克隆 | 第47-49页 |
| 3.6.1 RT-PCR扩增的产物分析 | 第47页 |
| 3.6.2 重组质粒的筛选 | 第47-48页 |
| 3.6.3 序列分析 | 第48-49页 |
| 3.7 超表达载体的构建 | 第49-51页 |
| 3.7.1 超表达重组质粒的菌体PCR检测 | 第49-50页 |
| 3.7.2 超表达重组质粒的酶切检测 | 第50-51页 |
| 3.8 RNAi载体的构建 | 第51-55页 |
| 3.8.1 正、反义片段的扩增 | 第51-52页 |
| 3.8.2 重组质粒pKANNIBAL(+)的菌体PCR检测 | 第52-53页 |
| 3.8.3 重组质粒pKANNIBAL(+)的双酶切检测 | 第53-54页 |
| 3.8.4 重组质粒pKANNIBAL(+/-)的双酶切检测 | 第54页 |
| 3.8.5 RNAi双元表达载体的检测 | 第54-55页 |
| 3.9 甜瓜果实的瞬时表达分析 | 第55-57页 |
| 3.10 甜瓜的遗传转化 | 第57-59页 |
| 3.10.1 T_1代转化植株的检测 | 第57-58页 |
| 3.10.2 T_1代转化植株的表型鉴定 | 第58-59页 |
| 四、讨论 | 第59-61页 |
| 五、结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
