摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
引言 | 第13-19页 |
0.1 概述 | 第13-14页 |
0.2 研究意义和立题依据 | 第14-15页 |
0.3 构建胰岛素抵抗模型方法及细胞系 | 第15-16页 |
0.4 主要实验方法技术概述 | 第16-18页 |
0.4.1 葡萄糖氧化酶法测定细胞的葡萄糖利用量 | 第16-17页 |
0.4.2 酶联免疫吸附方法(ELISA) | 第17页 |
0.4.3 蛋白质印迹法(Western Blot) | 第17-18页 |
0.5 本文的目的及意义 | 第18-19页 |
第1章 初步探讨AWRK6对胰岛素抵抗的抑制作用 | 第19-28页 |
1.1 引言 | 第19页 |
1.2 实验材料 | 第19-21页 |
1.2.1 细胞系 | 第19-20页 |
1.2.2 主要仪器和设备 | 第20页 |
1.2.3 实验所用主要试剂 | 第20页 |
1.2.4 实验所需溶液以及完全培养的配置 | 第20-21页 |
1.3 实验方法 | 第21-25页 |
1.3.1 细胞培养 | 第21-22页 |
1.3.2 MTT筛选AERK6最佳作用浓度 | 第22-23页 |
1.3.3 鉴定细胞胰岛素抵抗模型建立成功 | 第23-24页 |
1.3.4 AWRK6对胰岛素抵抗模型作用的初步研究 | 第24页 |
1.3.5 细胞冻存 | 第24页 |
1.3.6 统计方法 | 第24-25页 |
1.4 实验结果 | 第25-27页 |
1.4.1 细胞培养结果 | 第25页 |
1.4.2 AWRK6对HepG2无影响最佳作用浓度的筛选 | 第25-26页 |
1.4.3 鉴定胰岛素抵抗细胞模型构建是否成功 | 第26页 |
1.4.4 AWRK6对细胞模型葡萄糖消耗量及TG合成量的影响 | 第26-27页 |
1.5 本章小结 | 第27-28页 |
第2章 鉴定AWRK6体内对胰岛素抵抗的抑制作用 | 第28-39页 |
2.1 引言 | 第28页 |
2.2 实验材料 | 第28-29页 |
2.2.1 实验所用主要试剂 | 第28-29页 |
2.2.2 所用溶液配制 | 第29页 |
2.3 实验方法 | 第29-32页 |
2.3.1 小鼠脂肪乳灌胃 | 第29-30页 |
2.3.2 腹腔注射STZ构建胰岛素抵抗小鼠模型 | 第30页 |
2.3.3AWRK6对胰岛素抵抗小鼠的作用分析 | 第30页 |
2.3.4 小鼠糖耐量(OGTT)测定 | 第30-31页 |
2.3.5 ELISA对AWRK6作用于模型小鼠后各指标检测 | 第31-32页 |
2.4 实验结果 | 第32-37页 |
2.4.1 小鼠体重变化 | 第32-33页 |
2.4.2 小鼠血糖值变化 | 第33页 |
2.4.3 AWRK6对小鼠糖耐受能力的影响 | 第33-34页 |
2.4.4 AWRK6对小鼠空腹状态下血浆中胰岛素含量的影响 | 第34页 |
2.4.5 AWRK6对小鼠血浆中TG、TC含量的影响 | 第34页 |
2.4.6 AWRK6对小鼠肝脏以及肌肉中TG含量的影响 | 第34-35页 |
2.4.7 AWRK6对小鼠肝糖以及肌肉中TC含量的影响 | 第35-36页 |
2.4.8 AWRK6对小鼠肝脏中肝糖原含量的影响 | 第36页 |
2.4.9 AWRK6对小鼠肌肉中肌糖原含量的影响 | 第36-37页 |
2.5 本章小结 | 第37-39页 |
第3章 Western Blot对AWRK6抑制胰岛素抵抗作用机制初步探究 | 第39-46页 |
3.1 引言 | 第39-40页 |
3.2 实验材料 | 第40-41页 |
3.2.1 实验所需试剂 | 第40页 |
3.2.2 实验主要仪器 | 第40页 |
3.2.3 实验所用试剂 | 第40-41页 |
3.3 实验方法 | 第41-44页 |
3.3.1 小鼠肌肉总蛋白的提取 | 第41-42页 |
3.3.2 BCA检测提取蛋白浓度 | 第42-43页 |
3.3.3 western blot检测 | 第43-44页 |
3.4 结果 | 第44-45页 |
3.4.4 表达产物的Western Blot | 第44-45页 |
3.5 本章小结 | 第45-46页 |
结论 | 第46-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-52页 |
攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第52-53页 |