| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 人工血管支架介入治疗的发展史及现状 | 第13-14页 |
| 1.2 血管支架及材料表面内皮化改性与组织诱导 | 第14-19页 |
| 1.2.1 体外内皮化及其局限 | 第15-16页 |
| 1.2.2 体内内皮化 | 第16-19页 |
| 1.3 血管支架表面内皮祖细胞诱导内皮化改性 | 第19-21页 |
| 1.3.1 内皮祖细胞概述 | 第19-20页 |
| 1.3.2 内皮祖细胞的捕获 | 第20-21页 |
| 1.4 核酸适配子 | 第21-22页 |
| 1.5 多巴胺和聚乙烯亚胺在生物材料上的应用 | 第22-24页 |
| 1.5.1 多巴胺在生物材料上的应用 | 第22-23页 |
| 1.5.2 聚乙烯亚胺在生物材料上的应用 | 第23-24页 |
| 1.6 本论文的研究意义目的以及研究内容 | 第24-26页 |
| 1.6.1 研究目的与意义 | 第24-25页 |
| 1.6.2 研究的主要内容 | 第25-26页 |
| 1.7 技术路线 | 第26-27页 |
| 第2章 不锈钢表面诱导内皮化功能层的制备和表征 | 第27-38页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 诱导内皮化功能层的制备 | 第27-29页 |
| 2.2.1 不锈钢试片制备 | 第27-28页 |
| 2.2.2 在316L不锈钢表面沉积聚多巴胺和聚乙烯亚胺涂层 | 第28页 |
| 2.2.3 紫外灭菌 | 第28页 |
| 2.2.4 在样品表面固定核酸适配子 | 第28页 |
| 2.2.5 诱导内皮化功能层的制备模式图 | 第28-29页 |
| 2.3 样品编号 | 第29页 |
| 2.4 样品材料学表征 | 第29-30页 |
| 2.5 结果分析 | 第30-36页 |
| 2.5.1 涂层的XPS分析 | 第30-31页 |
| 2.5.2 涂层表面胺基荧光染色分析 | 第31页 |
| 2.5.3 涂层表面Zeta电位分析 | 第31-32页 |
| 2.5.4 DOPA-PEI涂层固定核酸适配子前后的ATR-FTIR结果分析 | 第32-33页 |
| 2.5.5 DOPA-PEI表面固定核酸适配子前后的XPS分析 | 第33-34页 |
| 2.5.6 核酸适配子改性表面核酸适配子荧光染色分析 | 第34-35页 |
| 2.5.7 水接触角(WCA)分析 | 第35页 |
| 2.5.8 石英晶体微天平(QCM-D)定量结果分析 | 第35-36页 |
| 2.6 讨论 | 第36-37页 |
| 2.7 小结 | 第37-38页 |
| 第3章 核酸适配子改性表面的静态细胞相容性评价 | 第38-46页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 试验材料和方法 | 第38-40页 |
| 3.2.1 ECs的获取 | 第38-39页 |
| 3.2.2 在样品表面种植ECs | 第39页 |
| 3.2.3 SMCs的获取 | 第39页 |
| 3.2.4 在样品表面种植SMCs | 第39-40页 |
| 3.3 细胞相容性评价 | 第40-45页 |
| 3.3.1 生物学性能评价 | 第40页 |
| 3.3.2 结果分析 | 第40-44页 |
| 3.3.3 讨论 | 第44-45页 |
| 3.4 小结 | 第45-46页 |
| 第4章 核酸适配子改性表面的动态内皮祖细胞捕获性能评价 | 第46-54页 |
| 4.1 引言 | 第46-47页 |
| 4.2 试验材料和方法 | 第47-52页 |
| 4.2.1 EPCs的获取 | 第47-48页 |
| 4.2.2 EPCs的动态捕获 | 第48-49页 |
| 4.2.3 EPCs的静态培养 | 第49-50页 |
| 4.2.4 结果分析与讨论 | 第50-52页 |
| 4.3 小结 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
