| 提要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 引言 | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-16页 |
| 1 脊髓损伤及其研究背景 | 第11-12页 |
| 1.1 脊髓损伤的流行病学研究及危害 | 第11页 |
| 1.2 脊髓损伤的致病机理 | 第11-12页 |
| 2 脊髓损伤与细胞自噬 | 第12-14页 |
| 2.1 细胞自噬研究概述 | 第12-13页 |
| 2.2 脊髓损伤后的细胞自噬 | 第13-14页 |
| 3 论文的主要内容 | 第14页 |
| 4 研究的创新性及意义 | 第14-16页 |
| 第二章 中药蒲黄改善脊髓损伤大鼠运动功能的实验研究 | 第16-27页 |
| 1 引言 | 第16-18页 |
| 2 主要仪器和材料 | 第18页 |
| 2.1 主要仪器 | 第18页 |
| 2.2 主要试剂 | 第18页 |
| 2.3 实验动物 | 第18页 |
| 3 方法 | 第18-22页 |
| 3.1 大鼠脊髓损伤模型的建立 | 第18-19页 |
| 3.2 大鼠脊髓损伤模型的评价 | 第19-20页 |
| 3.3 蒲黄溶液的制备 | 第20页 |
| 3.4 动物分组及给药方式 | 第20页 |
| 3.5 大鼠脊髓损伤后神经功能的评价 | 第20-22页 |
| 3.6 统计学分析 | 第22页 |
| 4 结果 | 第22-24页 |
| 4.1 大鼠模型的建立 | 第22页 |
| 4.2 中药蒲黄对脊髓损伤大鼠运动功能的改善作用 | 第22-24页 |
| 5 讨论 | 第24-26页 |
| 5.1 实验动物的选择 | 第24页 |
| 5.2 脊髓损伤模型的选择 | 第24页 |
| 5.3 损伤节段的选定 | 第24-25页 |
| 5.4 中药蒲黄对脊髓损伤后运动功能的改善作用 | 第25-26页 |
| 6 结论 | 第26-27页 |
| 第三章 中药蒲黄对脊髓损伤大鼠细胞自噬的影响 | 第27-43页 |
| 1 引言 | 第27-28页 |
| 2 主要仪器和材料 | 第28-30页 |
| 2.1 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2.2 主要材料 | 第29-30页 |
| 3 方法 | 第30-37页 |
| 3.1 Real-time PCR检测大鼠脊髓组织中LC3和Beclin-1 的mRNA水平 | 第30-33页 |
| 3.2 免疫印迹（Western-blot）检测大鼠脊髓组织中LC3、Beclin-1、mROT和Akt蛋白水平 | 第33-35页 |
| 3.3 免疫荧光技术（Immunofluorescence）检测LC3和Beclin-1 | 第35-36页 |
| 3.4 统计学分析 | 第36-37页 |
| 4 结果 | 第37-40页 |
| 4.1 Real-time PCR测定LC3和Beclin-1 的mRNA水平 | 第37-38页 |
| 4.2 Western Blot测定损伤脊髓LC3、Beclin-1、mTOT和Akt的蛋白水平 | 第38-39页 |
| 4.3 免疫荧光技术检测损伤脊髓中的LC3和Beclin-1 | 第39-40页 |
| 5 讨论 | 第40-42页 |
| 6 结论 | 第42-43页 |
| 第四章 中药蒲黄对脊髓损伤大鼠的神经保护作用 | 第43-50页 |
| 1 引言 | 第43-44页 |
| 2 主要仪器和材料 | 第44页 |
| 2.1 主要仪器 | 第44页 |
| 2.2 主要材料 | 第44页 |
| 3 方法 | 第44-46页 |
| 3.1 对损伤脊髓髓鞘进行Luxol Fast blue染色 | 第44-45页 |
| 3.2 对损伤脊髓前角运动神经元进行尼氏染色 | 第45页 |
| 3.3 统计学分析 | 第45-46页 |
| 4 结果 | 第46-48页 |
| 4.1 中药蒲黄减少了脊髓损伤对大鼠髓鞘的损害 | 第46页 |
| 4.2 蒲黄治疗增加了大鼠脊髓损伤后脊髓前角运动神经元的数量 | 第46-48页 |
| 5 讨论 | 第48-49页 |
| 6 结论 | 第49-50页 |
| 结语 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 综述 中药蒲黄及其研究现状 | 第57-63页 |
| 参考文献 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 查新报告 | 第64-75页 |
