摘要 | 第3-17页 |
ABSTRACT | 第17-25页 |
引言 | 第28-34页 |
材料与方法 | 第34-64页 |
1、实验材料 | 第34页 |
2、主要试剂 | 第34-36页 |
3、主要仪器 | 第36-37页 |
4、5/6肾切除大鼠动物模型的建立 | 第37-41页 |
5、脂多糖诱导的短暂蛋白尿小鼠动物模型的建立 | 第41-44页 |
6、尿蛋白的测定 | 第44-46页 |
7、肾脏病理分析 | 第46-51页 |
8、条件永生性足细胞的培养、诱导及鉴定 | 第51-52页 |
9、足细胞的分组 | 第52-53页 |
10、足细胞uPAR的表达 | 第53-54页 |
11、定量PCR | 第54-57页 |
12、蛋白免疫印迹 | 第57-61页 |
13、足细胞活动力检测 | 第61-63页 |
统计学处理 | 第63-64页 |
结果 | 第64-89页 |
一、1,25(OH)2D3可以降低5/6肾切除大鼠蛋白尿模型中的蛋白尿和抑制肾小球硬化 | 第64-68页 |
二、1,25(OH)2D3对5/6肾切除大鼠蛋白尿模型uPAR表达的影响 | 第68-72页 |
三、1,25(OH)2D3可以降低脂多糖诱导小鼠蛋白尿和抑制足细胞足突融合 | 第72-75页 |
四、1,25(OH)2D3抑制LPS诱导小鼠足细胞uPAR表达 | 第75-79页 |
五、1,25(OH)2D3对足细胞uPAR表达的影响 | 第79-84页 |
六、1,25(OH)2D3对足细胞活动力的影响 | 第84-89页 |
讨论 | 第89-94页 |
结论 | 第94-96页 |
参考文献 | 第96-102页 |
中英文词表 | 第102-103页 |
在读博士期间的成果 | 第103-104页 |
附件 | 第104-105页 |
致谢 | 第105-106页 |
统计证明 | 第106-107页 |