| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 主要缩略词和符号表 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-17页 |
| 1.1 课题的提出 | 第11-12页 |
| 1.2 十字花科植物CMS的研究 | 第12-14页 |
| 1.2.1 细胞质雄性不育的类型 | 第12-13页 |
| 1.2.2 ogu CMS胞质不育类型 | 第13-14页 |
| 1.2.3 pol CMS类型 | 第14页 |
| 1.3 十字花科植物花药发育的研究 | 第14-15页 |
| 1.3.1 花药发育的过程 | 第14页 |
| 1.3.2 绒毡层、液泡同雄性不育的关系 | 第14-15页 |
| 1.3.3 雄性不育相关基因的研究 | 第15页 |
| 1.4 农艺性状、生理生化的研究 | 第15-16页 |
| 1.5 分子技术研究 | 第16页 |
| 1.6 存在的问题 | 第16-17页 |
| 2 引言 | 第17-18页 |
| 2.1 研究的目的与意义 | 第17页 |
| 2.2 研究内容 | 第17-18页 |
| 2.2.1 乌菜转育后代农艺性状的遗传趋势分析 | 第17页 |
| 2.2.2 乌菜转育后代品质性状的遗传趋势分析 | 第17页 |
| 2.2.3 乌菜花器官的观察 | 第17页 |
| 2.2.4 乌菜花药发育的细胞学研究 | 第17页 |
| 2.2.5 总DNA提取及不育基因PCR扩增 | 第17-18页 |
| 3 乌菜雄性不育的转育研究 | 第18-35页 |
| 3.1 材料与方法 | 第18-22页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第19页 |
| 3.1.3 田间设计 | 第19页 |
| 3.1.4 农艺性状调查方法与标准 | 第19-20页 |
| 3.1.5 数据处理 | 第20页 |
| 3.1.6 生理生化指标的测定 | 第20页 |
| 3.1.7 花器官形态调察 | 第20页 |
| 3.1.8 花粉活力的检测 | 第20页 |
| 3.1.9 花器育性及形态调查 | 第20-21页 |
| 3.1.10 乌菜不育系 12-14A细胞质类型鉴定 | 第21-22页 |
| 3.1.10.1 总DNA的提取 | 第21-22页 |
| 3.1.10.2 DNA浓度与纯度的检测 | 第22页 |
| 3.1.10.3 PCR引物设计 | 第22页 |
| 3.1.10.4 PCR扩增与电泳检测 | 第22页 |
| 3.2 结果与分析 | 第22-33页 |
| 3.2.1 乌菜高效转育体系的建立 | 第22-23页 |
| 3.2.2 乌菜F1代、亲本农艺性状调查及杂种优势分析 | 第23-27页 |
| 3.2.3 品质性状的测定 | 第27-29页 |
| 3.2.4 乌菜不育系 12-14A、保持系 12-14B的花器官形态观察 | 第29-32页 |
| 3.2.5 乌菜不育系 12-14A育性鉴定 | 第32页 |
| 3.2.6 乌菜不育系 12-14A胞质不育类型的鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3 讨论 | 第33-35页 |
| 4 乌菜花药细胞学观察 | 第35-41页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第35页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第35页 |
| 4.1.2.1 光学显微镜观察 | 第35页 |
| 4.1.2.2 扫描电镜观察 | 第35页 |
| 4.2 结果与分析 | 第35-39页 |
| 4.2.1 乌菜保持系 12-14B的花药观察 | 第35-36页 |
| 4.2.2 乌菜不育系 12-14A的花药观察 | 第36-38页 |
| 4.2.3 乌菜不育系和保持系成熟花药及柱头扫描电镜观察 | 第38-39页 |
| 4.3 讨论 | 第39-41页 |
| 5 全文结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 个人简介 | 第48-49页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第49页 |
