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BPDE诱导Swan 71滋养层细胞线粒体损伤的机制

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
英文缩略词汇表第14-15页
1 引言第15-17页
2 材料与方法第17-34页
    2.1 材料第17-21页
        2.1.1 实验对象与受试物第17页
        2.1.2 主要实验仪器第17-18页
        2.1.3 主要实验试剂第18-20页
        2.1.4 主要试剂配制第20-21页
    2.2 实验方法第21-34页
        2.2.1 细胞培养第21-22页
        2.2.2 细胞急性染毒模型建立第22页
        2.2.3 MTT实验检测细胞增殖活力第22-23页
        2.2.4 Transwell侵袭实验检测细胞侵袭能力第23页
        2.2.5 酶联免疫吸附试验检测细胞HCG分泌第23-24页
        2.2.6 细胞ROS含量测定第24页
        2.2.7 细胞MDA含量测定第24页
        2.2.8 细胞SOD含量测定第24-25页
        2.2.9 细胞线粒体膜电位的检测第25-26页
        2.2.10 透射电镜观察细胞线粒体第26页
        2.2.11 流式细胞术检测细胞凋亡第26页
        2.2.12 RT-qPCR检测各基因的表达第26-30页
        2.2.13 Western blot检测蛋白的表达第30-32页
        2.2.14 统计分析第32-34页
3 结果第34-54页
    3.1 BPDE抑制Swan 71 细胞增殖活力第34-35页
    3.2 BPDE对Swan 71 功能的影响第35-36页
        3.2.1 BPDE抑制Swan 71 细胞侵袭的能力第35页
        3.2.2 BPDE抑制Swan 71 细胞HCG分泌的能力第35-36页
    3.3 BPDE诱导Swan 71 细胞凋亡第36-38页
    3.4 BPDE诱导Swan 71 细胞产生氧化损伤第38-40页
        3.4.1 BPDE促进Swan 71 细胞内产生ROS第38页
        3.4.2 BPDE抑制Swan 71 细胞内总SOD的活性第38-39页
        3.4.3 BPDE促进Swan 71 细胞内MDA的产生第39-40页
    3.5 BPDE促进Swan 71 细胞促炎因子mRNA的表达第40-42页
    3.6 BPDE诱导线粒体膜电位降低第42页
    3.7 BPDE引起线粒体形态结构改变第42-43页
    3.8 BPDE染毒对Swan 71 细胞线粒体DNA拷贝数的影响第43-45页
    3.9 BPDE诱导Swan 71 细胞凋亡相关蛋白的改变第45-46页
    3.10 BPDE染毒对Swan 71 细胞线粒体融合和分裂基因的影响第46-51页
        3.10.1 线粒体融合和分裂基因扩增曲线和溶解曲线第46-48页
        3.10.2 BPDE促进分裂基因mRNA表达、抑制融合基因mRNA的表达第48-49页
        3.10.3 BPDE促进分裂蛋白表达、抑制融合蛋白的表达第49-51页
    3.11 BPDE促进Swan 71 细胞细胞色素C蛋白释放入胞浆第51页
    3.12 BPDE对Swan 71 细胞Caspase 3 活性的影响第51-54页
4 讨论第54-61页
    4.1 BPDE对Swan 71 细胞功能的影响第54-55页
    4.2 BPDE引起Swan 71 氧化损伤第55-56页
    4.3 BPDE对Swan 71 细胞线粒体的损伤第56-57页
    4.4 BPDE引起Swan 71 细胞凋亡相关机制的研究第57-58页
    4.5 BPDE对Swan 71 细胞线粒体分裂和融合的影响第58-59页
    4.6 BPDE对Swan 71 细胞细胞色素C释放的影响第59-61页
5 结论第61-62页
参考文献第62-68页
综述 线粒体分裂融合基因的研究现状第68-80页
    1.线粒体的融合第68-70页
    2.线粒体的分裂第70-71页
    3.线粒体分裂融合与细胞凋亡第71-72页
    4.线粒体分裂融合与疾病第72-74页
    5.结束语第74-75页
    参考文献第75-80页
个人简历在学期间发表的学术论文与研究成果第80-81页
致谢第81页

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