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转玉米C4型PEPC基因小麦对干旱胁迫反应的研究

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-11页
缩略语第12-14页
第一章 文献综述第14-36页
    1.1 植物耐早性研究现状第14页
    1.2 干旱胁迫对作物生理特性的影响第14-18页
        1.2.1 干旱胁迫对作物光合作用影响第14-15页
        1.2.2 干旱胁迫对渗透调节系统的影响第15-16页
        1.2.3 干旱胁迫对抗氧化系统的影响第16-17页
        1.2.4 干旱胁迫对膜系统的影响第17页
        1.2.5 干旱胁迫对作物生长形态影响第17-18页
    1.3 小麦耐旱性遗传改良的研究进展第18-22页
        1.3.1 小麦耐旱育种研究现状第18-19页
        1.3.2 小麦耐旱分子标记辅助育种第19-20页
        1.3.3 小麦耐旱转基因育种研究第20-22页
    1.4 PEPC基因及其功能机制研究第22-26页
        1.4.1 高等植物PEPC的催化机制第22-23页
        1.4.2 高等植物体中PEPC的功能第23-24页
        1.4.3 外源PEPC在C_3植物中过表达后的生理作用第24页
        1.4.4 转PEPC基因后代光合特征及产量特征研究进展第24-25页
        1.4.5 转PEPC基因后代抗逆性研究进展第25-26页
    1.5 蛋白质组学研究及其在植物胁迫研究中的应用第26-33页
        1.5.1 蛋白质组学的含义、研究内容及产生的科学背景第26-28页
        1.5.2 植物蛋白质组学研究的相关技术第28-30页
        1.5.3 胁迫中的蛋白质组研究第30-33页
    1.6 作物耐逆基因工程及研究展望第33页
    1.7 选题依据与意义第33-36页
第二章 干旱胁迫下转PEPC基因小麦光合特性分析第36-58页
    2.1 材料与方法第36-44页
        2.1.1 供试材料与处理第36-37页
        2.1.2 干旱胁迫下转PEPC基因小麦光合酶基因荧光定量表达分析第37-41页
        2.1.3 干旱胁迫下转PEPC基因小麦光合酶活力测定第41-43页
        2.1.4 光合特性测定方法第43-44页
    2.2 结果与分析第44-56页
        2.2.1 干旱胁迫下转PEPC基因小麦光合酶基因荧光定量表达分析第44-47页
        2.2.2 干旱胁迫下转PEPC基因小麦光合酶活性分析第47-51页
        2.2.3 转PEPC基因小麦叶片光合作用第51-54页
        2.2.4 转PEPC基因小麦叶绿素荧光参数第54-56页
    2.3 小结第56-58页
第三章 干旱胁迫下转PEPC基因小麦抗旱特性分析第58-72页
    3.1 材料与方法第58-61页
        3.1.1 供试材料与处理第58页
        3.1.2 叶片相对含水量及水分利用效率测定第58-59页
        3.1.3 渗透调节物含量测定第59-60页
        3.1.4 保护酶活性测定第60-61页
    3.2 结果与分析第61-70页
        3.2.1 转PEPC基因小麦叶片相对含水量及水分利用效率分析第61-63页
        3.2.2 转PEPC基因小麦叶片渗透调节物含量分析第63-67页
        3.2.3 保护酶活性分析第67-70页
    3.3 小结第70-72页
第四章 干旱胁迫下转PEPC基因小麦根系特性分析第72-76页
    4.1 材料与方法第72页
        4.1.1 供试材料与处理第72页
        4.1.2 根系特性测定方法第72页
    4.2 结果与分析第72-75页
        4.2.1 根系活力第72-73页
        4.2.2 根系体积第73-74页
        4.2.3 根系干重第74-75页
    4.3 小结第75-76页
第五章 干旱胁迫下转PEPC基因小麦蛋白质组分析第76-92页
    5.1 材料与方法第76-83页
        5.1.1 供试材料与处理第76页
        5.1.2 试剂与仪器第76-77页
        5.1.3 叶片总蛋白提取第77-78页
        5.1.4 双向电泳第78-80页
        5.1.5 胶的扫描和图像分析第80-81页
        5.1.6 蛋白点的胶内酶解和质谱分析与数据检索第81-82页
        5.1.7 实时荧光定量PCR(QRT-RCR)第82-83页
    5.2 结果与分析第83-91页
        5.2.1 差异蛋白点分离第83-84页
        5.2.2 差异表达蛋白的质谱鉴定与分析第84-90页
            5.2.2.1 转PEPC基因响应蛋白第84-86页
            5.2.2.2 干旱胁迫响应蛋白第86-88页
            5.2.2.3 转PEPC基因与干旱胁迫共同响应蛋白第88-90页
        5.2.3 差异蛋白荧光定量PCR分析第90-91页
    5.3 小结第91-92页
第六章 干旱胁迫下转PEPC基因小麦产量特性分析第92-96页
    6.1 材料与方法第92页
        6.1.1 供试材料与处理第92页
        6.1.2 干旱胁迫下转PEPC基因小麦产量测定方法第92页
    6.2 结果与分析第92-94页
        6.2.1 正常生长条件下转PEPC基因小麦产量特性分析第92页
        6.2.2 干旱胁迫下转PEPC基因小麦产量特征分析第92-94页
    6.3 小结第94-96页
第七章 讨论第96-102页
    7.1 干旱胁迫条件下转PEPC基因小麦的光合效能第96-97页
    7.2 转PEPC基因对小麦抗旱特性的调节作用第97-99页
    7.3 转PEPC基因小麦的蛋白质组学探讨第99-102页
        7.3.1 转PEPC基因响应蛋白第99-100页
        7.3.2 干旱胁迫响应蛋白第100页
        7.3.3 转PEPC基因与干旱胁迫共同响应蛋白第100-102页
全文研究结论第102-104页
本研究创新之处第104-106页
参考文献第106-120页
致谢第120-122页
攻读学位期间发表论文第122页

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