| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 上篇 文献综述 | 第16-27页 |
| 第一章 甜瓜属物种染色体核型分析及进化研究进展 | 第17-27页 |
| 1 甜瓜属物种染色体核型分析的研究进展 | 第17-20页 |
| 1.1 核型分析的方法与改进 | 第17-19页 |
| 1.1.1 染色体形态分析 | 第17页 |
| 1.1.2 染色体显带分析 | 第17-18页 |
| 1.1.3 原位杂交分析 | 第18-19页 |
| 1.2 植物核型分析中探针的发展与改进 | 第19-20页 |
| 1.2.1 基因组序列探针 | 第19页 |
| 1.2.2 染色体特异重复序列探针 | 第19-20页 |
| 2 甜瓜属物种染色体进化研究进展 | 第20-25页 |
| 2.1 染色体进化研究中方法的发展与改进 | 第21-23页 |
| 2.1.1 种间比较基因组学研究 | 第21-22页 |
| 2.1.1.1 分子标记遗传图谱 | 第21页 |
| 2.1.1.2 单核苷酸多态性 | 第21-22页 |
| 2.1.2 种内比较基因组学研究 | 第22-23页 |
| 2.2 染色体进化研究中探针的发展与改进 | 第23-25页 |
| 2.2.1 基于重复序列的比较染色体研究 | 第23-24页 |
| 2.2.2 基于染色体特异探针的比较染色体研究 | 第24-25页 |
| 2.2.3 基于染色体涂染的比较染色体研究 | 第25页 |
| 3 展望 | 第25-27页 |
| 下篇 研究内容 | 第27-71页 |
| 第二章 利用基因组原位杂交快速构建黄瓜变种间核型 | 第29-41页 |
| 1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 1.1 试验材料 | 第31页 |
| 1.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 1.2.1 染色体制片 | 第32页 |
| 1.2.2 基因组探针的制备 | 第32页 |
| 1.2.3 原位杂交及检测 | 第32页 |
| 1.2.4 图像检测及分析 | 第32-33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-37页 |
| 2.1 黄瓜基因组原位杂交揭示的栽培黄瓜和野生变种染色体核型特征 | 第33-35页 |
| 2.1.1 栽培黄瓜'9930'染色体核型特征分析 | 第33-34页 |
| 2.1.2 黄瓜野生变种C.sativus var hardwickii染色体核型特征分析 | 第34-35页 |
| 2.2 黄瓜核型模式图的构建 | 第35-37页 |
| 3 讨论 | 第37-41页 |
| 3.1 栽培黄瓜基因组构建的黄瓜种内两个变种染色体核型方法 | 第37-38页 |
| 3.2 GISH为植物种内变种间的核型分析提供了可行的方法 | 第38页 |
| 3.3 GISH为分析特定重复序列提供参考 | 第38-41页 |
| 第三章 基于比较细胞遗传图谱初步揭示甜瓜属主要物种间的进化关系 | 第41-55页 |
| 1 材料与方法 | 第43-44页 |
| 1.1 植物材料 | 第43-44页 |
| 1.2 染色体制片 | 第44页 |
| 1.3 DNA探针的制备 | 第44页 |
| 1.4 原位杂交及检测 | 第44页 |
| 1.5 基因密度分析 | 第44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-52页 |
| 2.1 通过sGISH与FISH表明甜瓜属物种染色体上TRS的分布 | 第44-47页 |
| 2.1.1 黄瓜sGISH的信号分布模式 | 第46页 |
| 2.1.2 酸黄瓜中sGISH的信号分布模式 | 第46-47页 |
| 2.1.3 甜瓜上sGISH的信号分布模式 | 第47页 |
| 2.1.4 非洲角中sGISH的信号分布模式 | 第47页 |
| 2.1.5 西印度黄瓜上sGISH的信号分布模式 | 第47页 |
| 2.2 基于cGISH分析甜瓜属物种中TRS的同源性 | 第47-49页 |
| 2.3 特定序列的比较作图揭示了甜瓜属物种间的进化 | 第49-50页 |
| 2.4 GISH分布模式与基因密度分布之间的关系 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52-55页 |
| 3.1 甜瓜属物种染色体进化的两种假说 | 第52页 |
| 3.2 相互cGISH可以揭示物种之间TRS的同源性 | 第52页 |
| 3.3 重复序列的分化是物种进化的驱动力 | 第52-55页 |
| 第四章 黄瓜单拷贝基因的染色体涂染及其在甜瓜属物种间染色体重排研究中的应用 | 第55-71页 |
| 1 材料与方法 | 第57-59页 |
| 1.1 植物材料和染色体制片 | 第57页 |
| 1.2 染色体制片 | 第57-58页 |
| 1.3 单拷贝基因探针分离与探针的制备 | 第58页 |
| 1.4 封阻DNA的制备 | 第58页 |
| 1.5 FISH及检测 | 第58-59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-70页 |
| 2.1 单拷贝基因的分离与探针纯化 | 第59页 |
| 2.2 利用单拷贝基因池构建黄瓜中期染色体核型 | 第59-60页 |
| 2.3 单拷贝基因FISH的灵敏度与可靠性 | 第60-62页 |
| 2.4 不同密度单拷贝基因池的涂染模式 | 第62-64页 |
| 2.5 黄瓜的染色体涂染 | 第64-66页 |
| 2.6 利用ScgCP技术评价基因组序列的拼接质量 | 第66-68页 |
| 2.7 甜瓜属物种间的比较染色体涂染 | 第68-70页 |
| 3 讨论 | 第70-71页 |
| 3.1 单拷贝基因探针能够提高FISH分辨率与实验效率 | 第70页 |
| 3.2 ScgCP技术为物种染色体重排研究提供新的方法 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-81页 |
| 全文结论 | 第81-83页 |
| 全文创新点 | 第83-85页 |
| 工作展望 | 第85-87页 |
| 附录 | 第87-117页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第117-119页 |
| 致谢 | 第119页 |
