| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 英文缩略表 | 第11-16页 |
| 1 绪论 | 第16-44页 |
| ·高等植物的光受体及植物体感受光信号的关键器官 | 第17-23页 |
| ·植物光受体的种类 | 第17-22页 |
| ·植物光受体研究展望 | 第22-23页 |
| ·植物体感受光信号的关键器官 | 第23页 |
| ·花青素苷的生物合成及其遗传调控 | 第23-32页 |
| ·花青素苷合成分支途径形成的机理 | 第23-27页 |
| ·花青素苷生物合成途径的遗传调控 | 第27-30页 |
| ·影响花青素苷呈色的主要因素及其遗传调控机理 | 第30-31页 |
| ·植物花青素苷生物合成研究展望 | 第31-32页 |
| ·光受体调控花青素苷生物合成的信号转导机制 | 第32-34页 |
| ·光照强度调控花青素苷生物合成的分子机制 | 第34-39页 |
| ·结构基因的表达对植物器官呈色的影响 | 第34-36页 |
| ·调节基因对结构基因表达的调控 | 第36-38页 |
| ·植物花青素苷依光合成研究展望 | 第38-39页 |
| ·观赏作物主要观赏性状形成的分子机制研究中常用技术和方法 | 第39-40页 |
| ·转录组测序 | 第39-40页 |
| ·转录组和蛋白质组的联合应用 | 第40页 |
| ·本研究的设计思想 | 第40-43页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第40-41页 |
| ·研究内容 | 第41-43页 |
| ·本研究的技术路线 | 第43-44页 |
| 2 光照对菊花舌状花中色素合成及其呈色的影响 | 第44-54页 |
| ·材料与方法 | 第44-46页 |
| ·试验材料和光照处理 | 第44页 |
| ·花色表型的测定 | 第44页 |
| ·舌状花中色素成分及含量的测定 | 第44-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-52页 |
| ·舌状花中色素成分及含量的测定 | 第46页 |
| ·花色表型、CIRG值和色素相对含量的比较分析 | 第46-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| 3 光照诱导菊花花青素苷生物合成的转录组分析 | 第54-74页 |
| ·材料与方法 | 第54-56页 |
| ·转录组文库的构建 | 第54-55页 |
| ·转录组测序、序列从头组装及功能注释 | 第55页 |
| ·Unigene表达量的计算 | 第55页 |
| ·代谢通路分析 | 第55页 |
| ·同源性比对和系统发育树的构建 | 第55-56页 |
| ·结果与讨论 | 第56-73页 |
| ·转录组测序及序列从头组装 | 第56-60页 |
| ·功能注释和分类 | 第60-62页 |
| ·响应光照的差异表达基因 | 第62-67页 |
| ·响应光照的代谢通路 | 第67-68页 |
| ·花青素苷代谢通路中的基因表达模式 | 第68-70页 |
| ·调控花青素苷生物合成的关键转录因子 | 第70-73页 |
| ·小结 | 第73-74页 |
| 4 不同光照条件下稳定表达的内参基因的筛选 | 第74-88页 |
| ·材料与方法 | 第74-77页 |
| ·试验材料和光照处理 | 第74页 |
| ·候选内参基因的筛选 | 第74-77页 |
| ·引物设计和特异性检测 | 第77页 |
| ·RT-qPCR分析 | 第77页 |
| ·数据分析 | 第77页 |
| ·内参基因表达的稳定性验证 | 第77页 |
| ·结果与分析 | 第77-84页 |
| ·引物的扩增效率 | 第77页 |
| ·候选内参基因的表达模式 | 第77-78页 |
| ·候选内参基因的表达稳定性 | 第78-80页 |
| ·内参基因表达的稳定性验证 | 第80-84页 |
| ·讨论 | 第84-86页 |
| ·基于转录组文库筛选候选内参基因的高效性 | 第84页 |
| ·用于菊花花青素苷生物合成和花发育分析的内参基因的稳定性 | 第84-85页 |
| ·内参基因表达综合分析的优越性 | 第85-86页 |
| ·小结 | 第86-88页 |
| 5 不同光照条件下花青素苷合成相关基因表达模式的比较研究 | 第88-98页 |
| ·材料与方法 | 第88-90页 |
| ·结果与分析 | 第90-94页 |
| ·基因表达模式的比较分析 | 第90-93页 |
| ·基因表达的系统聚类分析 | 第93-94页 |
| ·讨论 | 第94-96页 |
| ·结构基因与花青素苷含量的相关性 | 第94页 |
| ·转录因子的功能和互作 | 第94页 |
| ·光受体基因在舌状花和叶片中的表达模式 | 第94-95页 |
| ·COP1、HY5与光照诱导花青素苷生物合成的关系 | 第95-96页 |
| ·小结 | 第96-98页 |
| 6 光照诱导菊花花青素苷生物合成的蛋白质组分析 | 第98-110页 |
| ·材料与方法 | 第98-100页 |
| ·蛋白质组文库的构建 | 第98页 |
| ·iTRAQ分析 | 第98-99页 |
| ·数据分析 | 第99-100页 |
| ·结果与分析 | 第100-108页 |
| ·原始蛋白的鉴定 | 第100页 |
| ·差异表达蛋白的鉴定和功能分类 | 第100-102页 |
| ·差异表达蛋白的功能和通路富集分析 | 第102-107页 |
| ·蛋白质组与转录组文库的相关性分析 | 第107-108页 |
| ·讨论 | 第108-109页 |
| ·花青素苷生物合成酶的表达对植物器官呈色的影响 | 第108页 |
| ·光捕获叶绿体蛋白对植物体的光保护作用 | 第108-109页 |
| ·GDSL脂酶的结构及生物学功能 | 第109页 |
| ·小结 | 第109-110页 |
| 7 菊花花青素苷依光合成关键调节基因的分离和功能验证 | 第110-126页 |
| ·材料与方法 | 第110-116页 |
| ·调节基因cDNA全长序列的扩增 | 第110页 |
| ·CmMYB6的启动子序列扩增及分析 | 第110-112页 |
| ·转基因烟草株系的获得及指标测定 | 第112-116页 |
| ·结果与分析 | 第116-125页 |
| ·调节基因的cDNA全长序列特征 | 第116页 |
| ·R2R3-MYB类转录因子系统进化分析 | 第116-121页 |
| ·CmMYB6的启动子序列分析 | 第121页 |
| ·CmMYB6的转基因功能验证 | 第121-125页 |
| ·讨论 | 第125页 |
| ·小结 | 第125-126页 |
| 8 结论与展望 | 第126-130页 |
| ·菊花花青素苷依光合成的分子机制 | 第126页 |
| ·主要创新点 | 第126-127页 |
| ·后续研究工作展望 | 第127-130页 |
| 参考文献 | 第130-160页 |
| 个人简介 | 第160-162页 |
| 获得的研究成果 | 第162-164页 |
| 导师简介 | 第164-166页 |
| 致谢 | 第166页 |
