| 中文摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 缩略语 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-17页 |
| 一、抵挡汤对STZ诱导糖尿病大鼠视网膜病理形态学影响的研究 | 第17-41页 |
| 引言 | 第17页 |
| ·对象和方法 | 第17-22页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·主要实验药品和试剂 | 第17-18页 |
| ·主要实验仪器 | 第18页 |
| ·模型的建立 | 第18-19页 |
| ·实验分组 | 第19页 |
| ·实验给药 | 第19页 |
| ·动物处死和标本获取 | 第19页 |
| ·指标检测及方法 | 第19-21页 |
| ·计算机免疫组化图像分析 | 第21页 |
| ·统计学数据处理 | 第21-22页 |
| ·结果 | 第22-30页 |
| ·链脲佐菌素诱导糖尿病大鼠模型建立的相关指标检测 | 第22-26页 |
| ·大鼠视网膜病理形态学观察 | 第26-27页 |
| ·大鼠视网膜免疫组化ICAM-1和VCAM-1检测结果 | 第27-30页 |
| ·讨论 | 第30-40页 |
| ·STZ诱导糖尿病大鼠模型的建立 | 第30-33页 |
| ·视网膜形态学改变的观察 | 第33页 |
| ·粘附分子(ICAM-1、VCAM-1)与糖尿病性视网膜病变 | 第33-37页 |
| ·抵挡汤作用的研究现状以及其在本研究中的作用分析 | 第37-40页 |
| ·小结 | 第40-41页 |
| 二.抵挡汤对STZ诱导糖尿病大鼠视网膜病变基因表达影响的研究 | 第41-64页 |
| ·对象和方法 | 第41-46页 |
| ·实验动物 | 第41页 |
| ·主要试剂及用品 | 第41-42页 |
| ·主要仪器 | 第42页 |
| ·动物模型的建立及分组 | 第42页 |
| ·动物处死和标本获取 | 第42页 |
| ·主要试剂配制 | 第42页 |
| ·视网膜总RNA的提取与鉴定 | 第42-43页 |
| ·逆转录聚合酶链反应(RT-PCR) | 第43-46页 |
| ·PCR产物的半定量分析 | 第46页 |
| ·统计学分析 | 第46页 |
| ·结果 | 第46-53页 |
| ·视网膜总RNA提取结果 | 第46-47页 |
| ·VEGF在各组大鼠视网膜的mRNA表达 | 第47-49页 |
| ·TGF-β_1在各组大鼠视网膜的mRNA的表达 | 第49-51页 |
| ·PKC-β_2在各组大鼠视网膜的mRNA的表达 | 第51-53页 |
| ·讨论 | 第53-63页 |
| ·VEGF基因表达对糖尿病性视网膜病变的作用 | 第53-58页 |
| ·糖尿病性视网膜病变与转化生长因子-β通路 | 第58-61页 |
| ·蛋白激酶C(PKC)信号传导通路在糖尿病性视网膜病变中的作用 | 第61-63页 |
| ·小结 | 第63-64页 |
| 全文结论 | 第64-65页 |
| 论文创新点 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-85页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第85-86页 |
| 附图 | 第86-90页 |
| 综述 | 第90-108页 |
| (一) STZ诱导大鼠糖尿病性视网膜病变动物模型的建立 | 第90-93页 |
| (二) 动物实验研究糖尿病性视网膜病变的主要思路 | 第93-98页 |
| (三) 应用中医药进行糖尿病性视网膜病变研究的现状 | 第98-100页 |
| (四) 总结 | 第100页 |
| 综述参考文献 | 第100-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
