| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 中英符号缩略词表 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1 亚麻荠研究进展 | 第11-14页 |
| ·亚麻荠的优良栽培特性 | 第11-12页 |
| ·亚麻荠极高的食用价值 | 第12页 |
| ·亚麻荠的工业价值 | 第12页 |
| ·现代生物技术对亚麻荠育种的影响 | 第12-14页 |
| 2 芸薹属油菜再生体系研究进展 | 第14-16页 |
| ·基因型 | 第14-15页 |
| ·外植体 | 第15页 |
| ·激素 | 第15-16页 |
| ·不同苗龄外植体 | 第16页 |
| ·AgNO_3 | 第16页 |
| 3 KLU 基因研究概况 | 第16-17页 |
| 4 植物遗传转化方法研究进展 | 第17-21页 |
| ·依赖组织培养的植物遗传转化 | 第17-20页 |
| ·不依赖组织培养的植物遗传转化 | 第20-21页 |
| 第二章 pINO 启动子和 KLU 基因克隆及其植物表达载体的构建 | 第21-34页 |
| 1 试验材料 | 第21页 |
| ·菌株和质粒 | 第21页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·生化试剂 | 第21页 |
| ·实验仪器 | 第21页 |
| 2 试验方法 | 第21-28页 |
| ·pINO 启动子和 KLU 基因的克隆 | 第21-26页 |
| ·植物表达载体 pCambia2301::pINO::KLU 的构建 | 第26-27页 |
| ·植物表达载体转化根癌农杆菌 GV3101 | 第27-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-34页 |
| ·pINO 启动子和 KLU 基因的克隆 | 第28-30页 |
| ·植物表达载体 pCambia2301::pINO::KLU 的构建 | 第30-33页 |
| ·植物表达载体转化根癌农杆菌GV3101 | 第33-34页 |
| 第三章 亚麻荠高效再生体系的建立 | 第34-39页 |
| 1 材料与方法 | 第34页 |
| ·植物材料 | 第34页 |
| ·培养基 | 第34页 |
| ·无菌苗的获得 | 第34页 |
| ·外植体的准备及接种 | 第34页 |
| ·芽苗增殖培养、生根培养 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-39页 |
| ·最优亚麻荠种子消毒方法 | 第34-35页 |
| ·不同激素类型和浓度对子叶和下胚轴外植体的影响 | 第35-36页 |
| ·外植体苗龄对子叶柄分化的影响 | 第36-37页 |
| ·硝酸银对不定芽分化的影响 | 第37-38页 |
| ·再生芽增殖培养及生根 | 第38-39页 |
| 第四章 KLU 基因转化亚麻荠的初步研究 | 第39-44页 |
| 1 试验材料 | 第39页 |
| ·菌株和质粒 | 第39页 |
| ·植物材料 | 第39页 |
| 2 试验方法 | 第39-40页 |
| ·亚麻荠的准备 | 第39页 |
| ·最适 Kan 筛选浓度的确定 | 第39页 |
| ·农杆菌介导的 Floral dip 方法转化亚麻荠 | 第39页 |
| ·T0 代种子的 Kan 筛选 | 第39-40页 |
| ·抗性苗的 PCR 检测 | 第40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-44页 |
| ·最适 Kan 筛选浓度的确定 | 第40-41页 |
| ·农杆菌介导亚麻荠荠遗传转化的影响分析 | 第41-42页 |
| ·T0 代种子的 Kan 筛选 | 第42-43页 |
| ·转基因抗性苗的 PCR | 第43-44页 |
| 第五章 讨论 | 第44-46页 |
| 1 亚麻荠高效再生体系的创建 | 第44页 |
| 2 农杆菌介导的浸花法转化亚麻荠 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 附录一 主要技术路线图 | 第50-51页 |
| 附录二 pCambia2301::pINO::KLU 植物表达载体构建流程图 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53-54页 |
| 导师评阅表 | 第54页 |
