| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-18页 |
| 第2章 综述 | 第18-28页 |
| 1.MAPK 信号转导通路 | 第18-19页 |
| 2.JAK/STAT 信号通路 | 第19-20页 |
| 3.PI3K/Akt 信号通路 | 第20-21页 |
| 4.NF-κB 信号通路 | 第21-22页 |
| 5.Rho/Rho-kinase 信号转导通路 | 第22页 |
| 6.ActA/Smads 信号通路 | 第22-23页 |
| 7. PKA-CREB 信号转导通路 | 第23-24页 |
| 8.Toll 样受体 4 信号转导通路 | 第24-25页 |
| 9.Notch 信号通路 | 第25-26页 |
| 10.结语 | 第26-28页 |
| 第3章 PC12 细胞转化为神经元样细胞的培养、鉴定及氧糖剥夺模型的制备 | 第28-40页 |
| ·材料 | 第28-30页 |
| ·细胞株 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28-29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| ·主要试剂的配制 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-32页 |
| ·PC12 细胞培养 | 第30页 |
| ·PC12 细胞转化为神经元样细胞的培养 | 第30页 |
| ·PC12 细胞转化为神经元的鉴定 | 第30-31页 |
| ·PC12 细胞氧糖剥夺模型（OGD）的建立 | 第31页 |
| ·PC12 细胞氧糖剥夺模型评价 | 第31-32页 |
| ·统计学处理 | 第32页 |
| ·实验结果 | 第32-36页 |
| ·NGF 诱导 PC12 细胞转化为神经元样细胞的培养 | 第32-33页 |
| ·PC12 细胞转化为神经元样细胞的的鉴定 | 第33-34页 |
| ·PC-12 细胞氧糖剥夺（OGD）模型的建立 | 第34页 |
| ·PC-12 细胞氧糖剥夺（OGD）模型的评价 | 第34-36页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| ·小结 | 第38-40页 |
| 第4章 靶向沉默 Notch1 基因及沉默效果检测 | 第40-54页 |
| ·材料 | 第40-42页 |
| ·细胞株 | 第40页 |
| ·主要试剂 | 第40-41页 |
| ·主要仪器 | 第41-42页 |
| ·实验方法 | 第42-48页 |
| ·PC12 细胞转化为神经元样细胞的培养、鉴定及分组 | 第42页 |
| ·Notch1-siRNA 靶点的选择、设计及合成 | 第42页 |
| ·细胞转染 | 第42-43页 |
| ·转染效率检测 | 第43页 |
| ·Realtime-PCR 检测 Notch1 mRNA 表达 | 第43-45页 |
| ·Western blot 检测 Notch1 蛋白表达 | 第45-47页 |
| ·转染毒性检测 | 第47页 |
| ·siRNA 最佳作用浓度的筛选 | 第47页 |
| ·siRNA 最佳作用时间的筛选 | 第47-48页 |
| ·统计学处理 | 第48页 |
| ·结果 | 第48-52页 |
| ·转染效率检测 | 第48页 |
| ·沉默效果检测 | 第48-49页 |
| ·转染毒性检测 | 第49-50页 |
| ·Notch1-siRNA 最佳浓度的筛选 | 第50-51页 |
| ·Notch1-siRNA 最佳作用时间的筛选 | 第51-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| 第5章 Notch1 信号通路在神经元样 PC12 细胞 OGD 损伤后表达变化及 Notch1-siRNA 对其影响 | 第54-62页 |
| ·材料 | 第54-55页 |
| ·细胞株 | 第54页 |
| ·主要试剂 | 第54-55页 |
| ·主要仪器 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-56页 |
| ·PC12 细胞转化为神经元样细胞的培养、鉴定、OGD 模型制备及分组 | 第55-56页 |
| ·细胞转染 | 第56页 |
| ·Realtime-PCR 检测 Notch1mRNA 表达 | 第56页 |
| ·Western blot 检测 Notch1 及 NICD 蛋白表达 | 第56页 |
| ·统计学处理 | 第56页 |
| ·结果 | 第56-58页 |
| ·Realtime-PCR 检测 Notch1 mRNA 表达 | 第56-57页 |
| ·Western blot 检测 Notch1 及 NICD 蛋白表达 | 第57-58页 |
| ·讨论 | 第58-60页 |
| ·小结 | 第60-62页 |
| 第6章 Notch1-siRNA 对神经元样 PC12 细胞缺血性损伤的影响及机制 | 第62-70页 |
| ·材料 | 第62-63页 |
| ·细胞株 | 第62页 |
| ·主要试剂 | 第62-63页 |
| ·主要仪器 | 第63页 |
| ·实验方法 | 第63-64页 |
| ·PC12 细胞转化为神经元样细胞的培养、鉴定、OGD 模型制备及分组 | 第63页 |
| ·细胞转染 | 第63页 |
| ·细胞凋亡检测 | 第63-64页 |
| ·Realtime-PCR 检测 IAP-1 和 Caspase-3 mRNA 表达 | 第64页 |
| ·Western blot 检测 IAP-1 和 Caspase-3 蛋白表达 | 第64页 |
| ·统计学处理 | 第64页 |
| ·结果 | 第64-67页 |
| ·FCM 检测细胞凋亡率 | 第64-65页 |
| ·Realtime-PCR 检测 IAP-1 和 Caspase-3mRNA 表达 | 第65-66页 |
| ·Western-blot 检测 IAP-1 和 Caspase-3 蛋白表达 | 第66-67页 |
| ·讨论 | 第67-69页 |
| ·小结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-85页 |
| 结论 | 第85-86页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
