| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-21页 |
| ·天然药物研究进展 | 第9-12页 |
| ·天然药物发展简介 | 第9-10页 |
| ·天然药物功能研究进展 | 第10-12页 |
| ·sirt1 基因研究进展 | 第12-18页 |
| ·sirt1 基因简介 | 第12-14页 |
| ·sirt1 基因功能研究进展 | 第14-17页 |
| ·天然药物有效成分对 sirt1 基因作用研究进展 | 第17-18页 |
| ·天然药物活性成分筛选方法研究进展 | 第18-19页 |
| ·药物活筛选方法简介 | 第18页 |
| ·报告基因在天然药物筛选中的应用 | 第18-19页 |
| ·研究目的及意义 | 第19-21页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第21-29页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第21-23页 |
| ·实验方法 | 第23-29页 |
| ·天然药物的提取方法 | 第23页 |
| ·人基因组 DNA 的提取方法 | 第23页 |
| ·sirt1 启动子基因的克隆 | 第23-24页 |
| ·sirt1 荧光素酶报告基因质粒的构建 | 第24-25页 |
| ·质粒提取 | 第25页 |
| ·去内毒素质粒提取 | 第25-26页 |
| ·MTT 细胞毒性测定方法 | 第26页 |
| ·HEK293T 细胞转染方法 | 第26-27页 |
| ·双荧光素酶活性的测定方法 | 第27页 |
| ·HEK293T 细胞总 RNA 的提取及 Realtime PCR 测定方法 | 第27-28页 |
| ·HEK293T 细胞双氧水损伤模型的建立 | 第28页 |
| ·SIRT1 蛋白 ELISA 测定方法 | 第28-29页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第29-46页 |
| ·筛选 sirt1 激活剂细胞模型的构建 | 第29-36页 |
| ·荧光素酶报告基因载体的构建 | 第29-31页 |
| ·sirt1 激活剂细胞筛选模型的建立 | 第31-33页 |
| ·Res 对转染报告基因后的 HEK293T 细胞的 sirt1 转录水平影响 | 第33-36页 |
| ·小结 | 第36页 |
| ·天然药物提取物的初步筛选 | 第36-42页 |
| ·天然药物的提取 | 第36页 |
| ·天然药物水提取物细胞毒性测定 | 第36-39页 |
| ·天然水提物的活性筛选 | 第39-41页 |
| ·铃兰，泽泻，罗布麻，黄芩，棘果，虎杖水提物对 sirt1 转录水平的影响 | 第41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| ·天然药物的抗氧化作用研究 | 第42-46页 |
| ·SIRT1 蛋白表达量的测定 | 第42-43页 |
| ·双氧水诱导 HEK293T 细胞损伤模型的建立 | 第43页 |
| ·中药水提物的抗氧化损伤活性测定 | 第43-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 附录 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
