摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
符号说明及缩写 | 第11-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-28页 |
·粘细菌概述 | 第13-14页 |
·粘细菌的捕食行为 | 第14-17页 |
·细菌的蛋白分泌系统 | 第17-25页 |
·细菌的蛋白分泌系统概述 | 第17-21页 |
·细菌的Ⅱ型分泌系统 | 第21-23页 |
·粘细菌的蛋白分泌系统 | 第23页 |
·粘细菌的Ⅱ型蛋白分泌系统 | 第23-25页 |
·海洋粘细菌的研究 | 第25-26页 |
·本论文工作开展的思路及研究内容 | 第26-28页 |
第二章:橙色粘球菌HW-1遗传操作体系条件摸索 | 第28-46页 |
·实验材料 | 第29-32页 |
·菌株及质粒 | 第29页 |
·培养基 | 第29-30页 |
·实验试剂及仪器耗材 | 第30-32页 |
·实验方法 | 第32-39页 |
·目的基因缺失载体构建的流程 | 第32-38页 |
·HW-1野生菌株电转化条件的探索 | 第38-39页 |
·比较不同海水浓度液体CTT培养基中HW-1的生长状态 | 第38页 |
·HW-1的电转化 | 第38-39页 |
·实验结果与分析 | 第39-45页 |
·敲除载体的构建结果 | 第39-41页 |
·HW-1野生菌株的电转化 | 第41-45页 |
·比较不同海水浓度液体CTT培养基中HW-1聚团的强弱 | 第41-42页 |
·不同海水浓度和转速培养对HW-1电转化效率的影响 | 第42-43页 |
·不同电场强度对HW-1电转化效率的影响 | 第43-44页 |
·其他参数对HW-1电转化效率的影响 | 第44-45页 |
本章小结 | 第45-46页 |
第三章 :DK1622孤立分泌素基因的功能研究 | 第46-95页 |
·实验材料 | 第48-52页 |
·菌株及质粒 | 第48页 |
·培养基 | 第48页 |
·实验试剂及仪器耗材 | 第48-52页 |
·分析软件及网站 | 第52页 |
·实验方法 | 第52-65页 |
·引物设计与信息 | 第52-53页 |
·基因缺失载体构建 | 第53页 |
·基因置换载体的构建 | 第53-55页 |
·M.xanthus DK1622突变株的筛选纯化 | 第55-56页 |
·M.xanthus DK1622突变株的基本性质分析 | 第56-58页 |
·不同海水浓度下子实体发育及生孢能力分析 | 第56-57页 |
·不同海水浓度下菌株的运动能力分析 | 第57页 |
·不同海水浓度下生长曲线的变化 | 第57-58页 |
·不同海水浓度下捕食能力的分析 | 第58页 |
·胞外蛋白质组分析 | 第58-65页 |
·样品的制备 | 第58-59页 |
·蛋白纯化(Bio-rad clean-up Kit) | 第59-60页 |
·蛋白浓度测定 | 第60-61页 |
·双向电泳操作方法(按照Bio-rad双向电泳操作手册) | 第61-64页 |
·染色 | 第64页 |
·考染蛋白胶内酶解 | 第64-65页 |
·蛋白质谱鉴定 | 第65页 |
·实验结果与分析 | 第65-93页 |
·基因缺失载体的构建 | 第65-71页 |
·Mxan3106基因敲除载体的构建 | 第65-67页 |
·Mxan2514基因敲除载体的构建 | 第67-69页 |
·基因置换载体的构建 | 第69-71页 |
·突变株的筛选及纯化 | 第71-75页 |
·Mxan3106及Mxan2514全基因敲除突变体的构建 | 第71-72页 |
·Mxan2514置换Mxan3106突变体的构建 | 第72-75页 |
·Mxan3106全基因缺失突变株YL1601的基本性质分析 | 第75-82页 |
·不同海水浓度下子实体发育及生孢能力分析 | 第75-76页 |
·不同海水浓度下菌株的运动能力分析 | 第76-79页 |
·不同海水浓度下生长曲线的测定 | 第79-80页 |
·不同海水条件下捕食能力分析 | 第80-82页 |
·胞外比较蛋白质组学实验 | 第82-93页 |
·蛋白标准曲线的测定 | 第82页 |
·胞外分泌蛋白样品的制备与2-D分离 | 第82-86页 |
·细胞膜相连蛋白的分离鉴定 | 第86-89页 |
·YL1601与DK1622在15%海水条件下比较蛋白质组学实验(培养液中的分泌蛋白) | 第89-93页 |
本章小结 | 第93-95页 |
总结 | 第95-96页 |
附录 | 第96-97页 |
参考文献 | 第97-102页 |
致谢 | 第102-103页 |
攻读硕士期间主要研究成果 | 第103-104页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第104页 |