致谢 | 第1-6页 |
摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-13页 |
第一章 绪论 | 第13-28页 |
·前言 | 第13页 |
·转基因水稻TT51-1的研究意义 | 第13-15页 |
·转基因水稻的研究现状 | 第13-14页 |
·转基因水稻TT51-1及研究重点难点 | 第14-15页 |
·转基因质粒分子简介 | 第15-17页 |
·质粒分子及其标准物质 | 第15-16页 |
·转基因质粒分子的制备 | 第16-17页 |
·转基因质粒分子纯化技术研究进展 | 第17-20页 |
·转基因质粒分子纯化的意义 | 第17-19页 |
·转基因质粒分子纯化技术 | 第19-20页 |
·转基因质粒分子测量技术的研究进展 | 第20-26页 |
·转基因质粒分子测量的研究意义 | 第20-21页 |
·转基因质粒分子的质量浓度测量技术 | 第21-24页 |
·转基因质粒分子的拷贝数浓度测量技术 | 第24-26页 |
·研究目标及主要研究内容 | 第26-28页 |
·问题现状与研究目标 | 第26-27页 |
·主要研究内容 | 第27-28页 |
第二章 转基因水稻TT51-1质粒分子纯化技术研究 | 第28-41页 |
·前言 | 第28页 |
·转基因水稻TT51-1质粒分子的构建 | 第28-30页 |
·材料、实际及仪器 | 第28页 |
·实验方法 | 第28-29页 |
·结果与讨论 | 第29-30页 |
·转基因水稻TT51-1质粒分子的初步纯化 | 第30-34页 |
·材料、试剂及仪器 | 第31页 |
·实验方法 | 第31-32页 |
·结果与讨论 | 第32-34页 |
·转基因水稻TT51-1质粒分子的精度纯化 | 第34-39页 |
·材料、试剂及仪器 | 第34-35页 |
·实验方法 | 第35页 |
·结果与讨论 | 第35-39页 |
·转基因水稻TT51-1质粒分子中小分子与无机离子的去除 | 第39-40页 |
·材料、试剂及仪器 | 第39页 |
·实验方法 | 第39页 |
·结果与讨论 | 第39-40页 |
·本章小结 | 第40-41页 |
第三章 转基因水稻TT51-1质粒分子液相色谱同位素稀释质谱测量方法研究 | 第41-64页 |
·前言 | 第41-42页 |
·材料、试剂及仪器 | 第42页 |
·实验方法 | 第42-48页 |
·超声法与酶解法对比处理TT51-1质粒 | 第42-43页 |
·破碎质粒的酶解 | 第43-44页 |
·高效液相色谱(HPLC)分离4种单核苷酸 | 第44页 |
·三重串联四级杆质谱测量4种单核苷酸条件的确立 | 第44-45页 |
·同位素稀释方法标准溶液的制备和样品的质粒处理 | 第45-46页 |
·同位素稀释质谱方法确认 | 第46-47页 |
·同位素稀释法测定样品TT51-1质粒的质量浓度 | 第47-48页 |
·不确定度评定 | 第48页 |
·结果与讨论 | 第48-63页 |
·TT51-1质粒分子的破碎方法选择及条件优化 | 第48-50页 |
·酶解条件优化 | 第50-52页 |
·高效液相色谱(HPLC)分离条件 | 第52-53页 |
·三重串联四级杆质谱测量4种单核苷酸条件的优化 | 第53-58页 |
·同位素稀释质谱方法确认结果 | 第58-59页 |
·TT51-1质粒样品质量浓度的测定结果 | 第59-60页 |
·测量不确定度的评定结果 | 第60-63页 |
·本章小结 | 第63-64页 |
第四章 转基因水稻TI51-1质粒分子数字PCR测量方法研究 | 第64-77页 |
·前言 | 第64-65页 |
·材料、试剂及仪器 | 第65页 |
·实验方法 | 第65-68页 |
·数字PCR反应体系与反应参数 | 第65页 |
·数字PCR方法确认 | 第65-66页 |
·TT51-1质粒样品的梯度稀释 | 第66页 |
·数字PCR技术测定TT51-1质粒的浓度 | 第66-67页 |
·不确定度评定 | 第67-68页 |
·dPCR方法与IDMS方法测定pTT51-1样品结果的比较 | 第68页 |
·结果与讨论 | 第68-75页 |
·数字PCR反应优化结果 | 第68-69页 |
·数字PCR方法确认结果 | 第69-70页 |
·TT51-1质粒的数字PCR测量结果 | 第70-71页 |
·不确定度评定结果 | 第71-74页 |
·dPCR方法与IDMS方法测定结果的对比分析 | 第74-75页 |
·本章小结 | 第75-77页 |
第五章 结论 | 第77-78页 |
附录 | 第78-79页 |
参考文献 | 第79-82页 |
发表论文情况 | 第82页 |