摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-11页 |
上篇 文献综述 | 第11页 |
第一章 水稻耐旱性及耐旱转基因研究 | 第11-43页 |
1 旱灾与水稻生产 | 第11-12页 |
2 作物耐旱性的机制概述 | 第12-20页 |
·干旱胁迫信号在植物体内的传递的一般过程 | 第12-13页 |
·干旱信号在植物体内传递的主要信号分子 | 第13-20页 |
·脱落酸 | 第13-17页 |
·钙离子 | 第17-18页 |
·一氧化氮 | 第18-19页 |
·磷脂 | 第19-20页 |
3 水稻耐旱遗传改良 | 第20-41页 |
·耐旱的分子标记辅助育种 | 第20-21页 |
·水稻耐旱转基因育种 | 第21-41页 |
·调控基因 | 第24-36页 |
·功能蛋白编码基因 | 第36-41页 |
4 作物耐逆基因工程及研究展望 | 第41-43页 |
第二章 HARPIN蛋白及其编码基因 | 第43-51页 |
1 Harpin蛋白家族 | 第43-45页 |
2 Harpin的生物学效应 | 第45-47页 |
·诱导植物抗病性 | 第45-46页 |
·诱导植物的抗虫性 | 第46页 |
·诱导植株耐旱反应 | 第46页 |
·影响植物生长和增加植物产量 | 第46-47页 |
3 Harpin蛋白的作用机理 | 第47-48页 |
4 Harpin蛋白编码基因在植物基因工程方面的应用 | 第48-51页 |
第三章 全基因组表达谱及其在植物胁迫研究中的应用 | 第51-63页 |
1 植物胁迫 | 第51页 |
2 胁迫中的全基因组表达谱 | 第51-52页 |
3 全基因组表达谱在寻找目标基因中的作用 | 第52-58页 |
·微阵列技术 | 第52-57页 |
·基因表达连续分析 | 第57页 |
·大规模平行信号测序 | 第57-58页 |
4 全基因组表达谱在选择目标基因中的作用 | 第58-60页 |
5 全基因组表达谱在目标基因的评价中的作用 | 第60-63页 |
下篇 研究报告 | 第63页 |
第四章 超表达HARPIN编码基因HRF1增强水稻耐旱性 | 第63-79页 |
1 材料与方法 | 第65-68页 |
·植物生长和处理 | 第65页 |
·转基因水稻的耐旱性分析 | 第65页 |
·超量表达转基因植株离体条件下失水速率统计 | 第65页 |
·水稻气孔的扫描电镜检测 | 第65-66页 |
·ABA含量测定 | 第66页 |
·游离脯氨酸含量的测定 | 第66页 |
·可溶性糖含量的测定 | 第66-67页 |
·丙二醛(MDA)含量测定 | 第67页 |
·POD和SOD活性测定 | 第67页 |
·Quantitative Real-time RT-PCR分析 | 第67-68页 |
2 结果 | 第68-75页 |
·超表达hrf1显著提高了水稻的耐旱性 | 第68页 |
·超表达hrf1基因增强了水稻植株的保水能力 | 第68-70页 |
·转基因水稻中ABA积累导致的气孔运动的变化 | 第70-72页 |
·超表达hrf1提高了干旱胁迫下游离脯氨酸和可溶性糖的含量 | 第72页 |
·超表达hrf1基因增强水稻ROS清除能力和抗氧化胁迫的能力 | 第72-73页 |
·超表达hrf1基因提高了水稻中胁迫相关基因的表达 | 第73-75页 |
3 讨论 | 第75-79页 |
第五章 转HRF1基因抗逆水稻的转录谱分析 | 第79-101页 |
1 材料与方法 | 第81-84页 |
·所用实验材料及芯片 | 第81页 |
·植物组织RNA的提取 | 第81-82页 |
·芯片杂交与筛选 | 第82-83页 |
·实时荧光定量PCR分析 | 第83-84页 |
2 结果 | 第84-95页 |
·试验设计 | 第84页 |
·NJH12和R109中的差异表达基因 | 第84页 |
·芯片数据可靠性验证 | 第84-85页 |
·差异表达基因分析 | 第85-95页 |
·差异表达的防卫反应相关基因 | 第87-90页 |
·差异表达的非生物胁迫相关基因 | 第90-91页 |
·差异表达的胁迫相关转录因子基因 | 第91-93页 |
·差异表达的信号转导相关基因 | 第93-94页 |
·上调的能量代谢相关基因 | 第94-95页 |
3 讨论 | 第95-101页 |
参考文献 | 第101-133页 |
致谢 | 第133-135页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第135页 |