| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-17页 |
| 第1章 TSP1对于视网膜血管病变的作用机制 | 第17-47页 |
| ·血小板反应蛋白-1(TSP1) | 第17-39页 |
| ·TSP1 的发现，提纯和结构 | 第18-19页 |
| ·TSP1 与其它因子的相互作用 | 第19-26页 |
| ·TSP1 的调控 | 第26-29页 |
| ·TSP1 在血管表面受体、信号传导通路 | 第29-32页 |
| ·TSP1 的功能 | 第32-39页 |
| ·TSP1 基因敲除后对机体的影响 | 第39页 |
| ·视网膜缺血再灌注模型 | 第39-47页 |
| ·视网膜缺血再灌注模型的建立解剖及病理生理基础 | 第39-40页 |
| ·视网膜缺血再灌注模型的病理机制 | 第40-42页 |
| ·视网膜缺血再灌注模型的建立 | 第42-44页 |
| ·视网膜 IR 模型在糖尿病性视网膜病变研究的意义 | 第44-47页 |
| 第2章 糖尿病视网膜病变动物模型建立及病理变化 | 第47-63页 |
| ·实验材料 | 第48-50页 |
| ·主要仪器及设备 | 第48页 |
| ·主要试剂 | 第48-49页 |
| ·实验动物 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-56页 |
| ·腹腔注射 STZ | 第50页 |
| ·定量 PCR 方法测量氧诱导视网膜新生血管模型中各种因子表达 | 第50-52页 |
| ·无核毛细血管统计 | 第52-53页 |
| ·神经节细胞的丢失 | 第53-54页 |
| ·白细胞粘附功能测定 | 第54-55页 |
| ·血视网膜屏障功能 BRB 结果 | 第55页 |
| ·8OHDG 染色 | 第55-56页 |
| ·结果 | 第56-60页 |
| ·成功应用 STZ 腹腔注射方法制作糖尿病小鼠模型 | 第56-57页 |
| ·糖尿病视网膜病变无核毛细血管变化 | 第57-58页 |
| ·神经节细胞的丢失 | 第58页 |
| ·白细胞粘附功能测定 | 第58-59页 |
| ·血视网膜屏障功能 BRB 结果 | 第59-60页 |
| ·8OHDG 染色结果 | 第60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| ·结论 | 第62-63页 |
| 第3章 在视网膜缺血再灌注病变的中 TSP1KO 和 WT 的对照 | 第63-87页 |
| ·实验材料 | 第63-65页 |
| ·主要仪器及设备 | 第63-64页 |
| ·主要试剂 | 第64-65页 |
| ·实验动物 | 第65页 |
| ·实验方法 | 第65-71页 |
| ·视网膜缺血再灌注模型的建立 | 第65-67页 |
| ·定量 PCR 方法测量视网膜缺血再灌注模型中各种因子表达情况 | 第67页 |
| ·Western blot 方法测定野生型小鼠模型组 TSP1 表达升高 | 第67-69页 |
| ·无核毛细血管统计 | 第69页 |
| ·神经节细胞的丢失统计 | 第69页 |
| ·白细胞粘附功能测定 | 第69页 |
| ·血视网膜屏障功能 BRB 方法 | 第69页 |
| ·TUNNEL 染色 | 第69-70页 |
| ·8OHDG 染色方法 | 第70页 |
| ·测量 luminescence 变化 | 第70-71页 |
| ·结果 | 第71-80页 |
| ·成功建立了小鼠的高眼压诱导视网膜缺血再灌注模型 | 第71页 |
| ·视网膜缺血再灌注模型中各种炎症因子以及诱导凋亡因子的升高 | 第71-73页 |
| ·Western Blot 示 IR 后 TSP1 表达增加 | 第73页 |
| ·IR 组白细胞粘附于血管壁以及白细胞在组织中浸润 | 第73-75页 |
| ·视网膜 IR 导致视网膜形态改变和神经节细胞丢失 | 第75-76页 |
| ·视网膜 IR 模型组视网膜无核毛细血管的增加 | 第76-78页 |
| ·血视网膜屏障功能 BRB 结果 | 第78页 |
| ·TUNNEL 染色证实模型组细胞凋亡增加 | 第78-79页 |
| ·在 IR 后 24 小时，48 小时的磷酸化及总 P38、P65、AKT 的表达 | 第79页 |
| ·8OHDG 免疫组化染色对比野生型和 TSP1KO 小鼠线粒体损伤 | 第79-80页 |
| ·野生型和 TSP1KO 小鼠视网膜缺血再灌注模型 luminescence 变化 | 第80页 |
| ·讨论 | 第80-86页 |
| ·结论 | 第86-87页 |
| 第4章 通过 HREC培养进一步验证 TSP1 对于缺血再灌注损伤中内皮细胞的促进凋亡作用 | 第87-98页 |
| ·实验材料 | 第87-88页 |
| ·主要仪器及设备 | 第87-88页 |
| ·主要试剂 | 第88页 |
| ·HREC7-9 细胞系 | 第88页 |
| ·实验方法 | 第88-91页 |
| ·细胞复苏 | 第88-89页 |
| ·细胞计数，分盘 | 第89页 |
| ·低氧（1%O2）诱导刺激 HREC | 第89-90页 |
| ·用 siRNA 方法去除 TSP1 比较 | 第90页 |
| ·细胞死亡检测 ELISA 法 | 第90-91页 |
| ·实验结果 | 第91-95页 |
| ·低氧诱导后 HREC 释放 TSP1 增加，凋亡细胞同比例增加 | 第91-93页 |
| ·应用 siRNA 技术干涉 TSP1 的表达 | 第93-94页 |
| ·应用 siRNA 技术干涉 TSP1 的表达，检测细胞凋亡情况 | 第94页 |
| ·用不同浓度的葡萄糖刺激 HREC 的细胞凋亡情况 | 第94-95页 |
| ·葡萄糖浓度为 50mM 时，siTSP1 与 siCN 比较细胞凋亡情况 | 第95页 |
| ·讨论 | 第95-98页 |
| 第5章 结论 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-108页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第108-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
