| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 引言 | 第14-26页 |
| 1 胎盘的活性物质及其功能 | 第14-18页 |
| ·激素 | 第14-15页 |
| ·促性腺激素释放激素(GnRH) | 第14页 |
| ·促肾上腺皮质激素释放激素(CRH) | 第14页 |
| ·生长抑素(SS) | 第14页 |
| ·催产素(Oxytocin,OT) | 第14-15页 |
| ·神经肽_Y(NPY) | 第15页 |
| ·抑制素与激活素 | 第15页 |
| ·卵泡抑素(FS) | 第15页 |
| ·生长因子 | 第15-16页 |
| ·胰岛素样生长因子(IGFs ) | 第15-16页 |
| ·表皮生长因子(EGF) | 第16页 |
| ·转化生长因子(TGF) | 第16页 |
| ·细胞因子 | 第16-17页 |
| ·ILs | 第16-17页 |
| ·干扰素(IFN) | 第17页 |
| ·集落刺激因子-1 | 第17页 |
| ·肿瘤坏死因子-a(TNF-a) | 第17页 |
| ·白血病抑制因子(LIF) | 第17页 |
| ·胎盘免疫调节肽 | 第17-18页 |
| ·其它生物活性物质 | 第18页 |
| 2 人胎盘肽的生产流程 | 第18-19页 |
| 3 胎盘肽具有广泛的生物活性 | 第19-21页 |
| ·增强 T 淋巴细胞 E 受体的表达 | 第19页 |
| ·加强淋巴细胞对有丝分裂原的反应 | 第19页 |
| ·增强红细胞 C3b 受体的表达 | 第19页 |
| ·抑制亲细胞性抗体的产生 | 第19-20页 |
| ·抗衰老作用 | 第20页 |
| ·抗病毒性肝炎作用 | 第20页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第20-21页 |
| ·抗结核病的作用 | 第21页 |
| 4 胎盘肽和转移因子比较 | 第21-23页 |
| ·胎盘肽的一般理化特性与转移因子的理化特性存在着许多相似之处 | 第21-22页 |
| ·胎盘肽、转移因子紫外吸收光谱 | 第22页 |
| ·胎盘肽与转移因子经 G－25 层析图谱 | 第22-23页 |
| 5 动物胎盘肽的研究进展 | 第23-25页 |
| 6 本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 试验一牛、羊和猪胎盘肽的制备 | 第26-29页 |
| 1 材料 | 第26页 |
| ·牛、羊和猪胎盘来源 | 第26页 |
| ·主要仪器 | 第26页 |
| 2 胎盘肽的制备方法 | 第26-27页 |
| ·牛、羊和猪胎盘的处理 | 第26页 |
| ·超滤法的基本原理 | 第26-27页 |
| ·超过滤操作方法 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27页 |
| 4 讨论 | 第27-29页 |
| 试验二用加脲的Tricine-SDS-PAGE 电泳法初步鉴定牛、羊和猪胎盘肽的存在 | 第29-35页 |
| 1 材料 | 第29页 |
| ·Tricine—SDS—PAGE 蛋白质电泳溶液配制 | 第29页 |
| ·阳极缓冲液 | 第29页 |
| ·阴极缓冲液 | 第29页 |
| ·胶缓冲液 | 第29页 |
| ·丙烯酰胺贮存液的配制 | 第29页 |
| ·3C 丙烯酰胺贮存液 | 第29页 |
| ·6C 丙烯酰胺贮存液 | 第29页 |
| 2 方法 | 第29-31页 |
| ·SDS-PAGE 电泳法基本原理 | 第29-30页 |
| ·灌胶 | 第30-31页 |
| ·样品缓冲液的制备及样品的处理 | 第31页 |
| ·上样与电泳 | 第31页 |
| ·染色、脱色和胶的保存 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 试验三 紫外光扫描胎盘肽的最大吸收峰 | 第35-38页 |
| 1 材料 | 第35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| 2 测定 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-38页 |
| 试验四 紫外光吸收法测定胎盘肽的含量 | 第38-41页 |
| 1 材料 | 第38页 |
| ·主要试剂 | 第38页 |
| ·主要仪器 | 第38页 |
| 2 方法 | 第38-40页 |
| ·280nm 紫外光法原理 | 第38页 |
| ·牛血清白蛋白(BSA)标准液 | 第38页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第38-40页 |
| ·取 11 支干净试管,按表 3(Tab 3)加入试剂 | 第38-39页 |
| ·摇匀 | 第39页 |
| ·用分光光度计比色测定吸光值 A_(280nm) | 第39页 |
| ·以 A_(280nm)为纵坐标，标准蛋白质浓度为横坐标，绘制标准曲线 | 第39-40页 |
| ·样品测定 | 第40页 |
| 3 讨论 | 第40-41页 |
| 试验五 牛、羊和猪胎盘肽对兔淋巴细胞的调节作用 | 第41-46页 |
| 1 材料 | 第41-42页 |
| ·主要试剂 | 第41页 |
| ·主要仪器 | 第41页 |
| ·MTT 比色法 | 第41-42页 |
| ·基本原理 | 第41页 |
| ·试验操作方法 | 第41-42页 |
| 2 结果 | 第42-44页 |
| ·牛胎盘肽对兔抑制淋巴细胞转化指数的影响 | 第42-43页 |
| ·羊胎盘肽对兔抑制淋巴细胞转化率的影响 | 第43页 |
| ·猪胎盘肽对兔抑制淋巴细胞转化率的影响 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第56页 |
| 个人简介 | 第56页 |
