中文摘要 | 第1-12页 |
英文摘要 | 第12-15页 |
符号说明 | 第15-16页 |
第一部分 文献综述 | 第16-47页 |
1. 小麦基因转化方法 | 第16-21页 |
1.1 PEG介导法 | 第16页 |
1.2 激光微束法 | 第16-17页 |
1.3 电击法 | 第17页 |
1.4 微粒轰击法 | 第17页 |
1.5 花粉管通道法 | 第17-18页 |
1.6 农杆菌介导法 | 第18-21页 |
1.7 其他方法 | 第21页 |
2. 外植体类型的选择 | 第21-22页 |
3. 筛选方法 | 第22-23页 |
4. 外源基因检测方法 | 第23页 |
5. 转基因植物的表达分析方法 | 第23-25页 |
6. 植物盐害和耐盐机理研究进展 | 第25-34页 |
6.1 盐害机理 | 第25-26页 |
6.1.1 盐分积累的过程 | 第25页 |
6.1.2 渗透胁迫作用 | 第25-26页 |
6.1.3 Na+的离子毒害作用 | 第26页 |
6.1.4 氧化胁迫作用 | 第26页 |
6.2 植物耐盐机制 | 第26-31页 |
6.2.1 根细胞的选择吸收作用 | 第27-28页 |
6.2.2 木质部的选择性运输 | 第28页 |
6.2.3 韧皮部转运和外排 | 第28页 |
6.2.4 细胞内的区隔化 | 第28-29页 |
6.2.5 渗透调节 | 第29页 |
6.2.6 活性氧(ROS)在细胞内的清除机制 | 第29-30页 |
6.2.7 双子叶和单子叶植株耐盐机理的差别 | 第30-31页 |
6.3 培育耐盐农作物的方法 | 第31-33页 |
6.4 植物耐盐性的主要生理和生化指标 | 第33-34页 |
6.4.1 发芽率、发芽指数和活力指数 | 第33页 |
6.4.2 成活率和生长量 | 第33-34页 |
6.4.3 籽粒重和产量 | 第34页 |
6.4.4 Na~+,K~+,K~+/Na~+ | 第34页 |
6.4.5 其他生理生化指标 | 第34页 |
6.4.6 区分渗透胁迫和离子胁迫 | 第34页 |
7. 植物耐盐的分子机制研究现状 | 第34-42页 |
7.1 植物的盐胁迫信号转导途径 | 第35-36页 |
7.2 植物对盐胁迫的应答基因及其耐盐机制 | 第36-38页 |
7.3 Na~+/H~+逆向转运蛋白的研究进展 | 第38-42页 |
7.3.1 蛋白分子结构的特点 | 第38-39页 |
7.3.2 类型和同源性 | 第39页 |
7.3.3 生化特性和主要生理功能 | 第39-41页 |
7.3.4 表达模式及与耐盐性的关系 | 第41-42页 |
7.3.5 逆向转运蛋白的信号途径 | 第42页 |
8. 抗菌肽研究进展 | 第42-46页 |
8.1 抗菌肽的分子结构和生物学效应 | 第43-44页 |
8.2 抗菌肽的基因结构 | 第44页 |
8.3 抗菌肽的作用机理 | 第44页 |
8.4 抗菌肽基因工程 | 第44-46页 |
实验的目的和意义 | 第46-47页 |
第二部分 材料和方法 | 第47-70页 |
1. 农杆菌转化的受体材料 | 第47页 |
2. 培养基种类及成分 | 第47-48页 |
3. 农杆菌菌株和载体 | 第48-49页 |
4. 转化 | 第49页 |
5. 筛选和再生 | 第49页 |
6. PCR检测 | 第49-52页 |
6.1 DNA的提取 | 第49-50页 |
6.2 PCR引物 | 第50-51页 |
6.3 扩增体系 | 第51页 |
6.4 扩增程序 | 第51-52页 |
6.5 电泳 | 第52页 |
7. Southern杂交 | 第52-61页 |
7.1 大肠杆菌感受态细胞的制备及其转化 | 第52-53页 |
7.2 质粒提取 | 第53-54页 |
7.3 质粒酶切及探针片段的回收 | 第54-55页 |
7.4 DNA提取 | 第55页 |
7.5 基因组 DNA的酶切和电泳 | 第55-56页 |
7.6 转膜 | 第56-57页 |
7.7 探针标记 | 第57-58页 |
7.8 杂交及检测 | 第58-61页 |
8. 染色体原位杂交 | 第61-65页 |
8.1 药品 | 第61页 |
8.2 染色体制备 | 第61-62页 |
8.3 探针标记 | 第62-63页 |
8.4 杂交 | 第63-64页 |
8.5 信号产生和检测 | 第64-65页 |
9. RT-PCR分析 | 第65-66页 |
9.1 Trizol法提取叶片总RNA | 第65页 |
9.2 总 RNA的纯化 | 第65-66页 |
9.3 RT-PCR的体系和程序 | 第66页 |
10. T_2代遗传分析 | 第66页 |
11. 种子萌发率分析 | 第66-67页 |
12. 生长量分析 | 第67页 |
13. 成活率分析 | 第67页 |
14. Na~+,K~+分析 | 第67页 |
15. 耐盐小麦后代的田间产量分析 | 第67页 |
16. 离体叶段法白粉病抗性分析 | 第67-68页 |
17. 大田抗白粉病分析 | 第68页 |
18. 生长点浸染法 | 第68页 |
19. 快速扩增cDNA末端 | 第68-70页 |
19.1 5’RACE的一链cDNA合成 | 第68页 |
19.2 5’RACE扩增 | 第68-69页 |
19.3 3’RACE的一链cDNA合成 | 第69页 |
19.4 3’RACE扩增基本步骤 | 第69-70页 |
第三部分 结果和分析 | 第70-98页 |
实验一 液泡型Na~+/H~+逆向转运蛋白基因对小麦的转化及转基因后代的耐盐性分析 | 第70-83页 |
1. 抗性植株再生 | 第70页 |
2. PCR分析结果和转化频率 | 第70-71页 |
3. Southern杂交分析结果和外源基因的拷贝数 | 第71页 |
4. 转基因植株及后代的遗传分析 | 第71-72页 |
5. 染色体原位杂交结果 | 第72-73页 |
6. RT-PCR分析结果 | 第73-74页 |
7. 成活率分析 | 第74页 |
8. 种子萌发率分析结果 | 第74页 |
9. 生长量分析结果 | 第74-77页 |
10. 耐盐小麦后代的田间产量分析结果 | 第77-78页 |
11. Na~+,K~+分析结果 | 第78-80页 |
12. Ubinqutin启动子对pROK_2/AtNHX1基因转化小麦的影响 | 第80-83页 |
实验二 高羊茅Na~+/H~+逆向转运蛋白基因的克隆 | 第83-92页 |
1. 材料来源 | 第83页 |
2. 高羊茅(绿洲)Na~+/H~+逆向转运蛋白基因FaNHX1部分片断的克隆 | 第83-84页 |
3. Na~+/H~+逆向转运蛋白基因FaNHX1 3~、末端的获得 | 第84-85页 |
4. Na~+/H~+逆向转运蛋白基因FaNHX1 5~、末端的获得 | 第85-87页 |
5. Na~+/H~+逆向转运蛋白基因全长cDNA的获得 | 第87-92页 |
实验三 根瘤农杆菌介导将大麦叶片型α-硫荃基因DB4导入小麦获得转基因植株及后代 | 第92-98页 |
1. 转基因植株的再生 | 第92-93页 |
2. 抗性植株的PCR和 Southern杂交分析 | 第93-94页 |
3. 转基因植株后代的遗传 | 第94-95页 |
4. 转基因植株后代的离体白粉病抗性分析 | 第95页 |
5. 转基因植株后代的大田抗白粉病分析和遗传分析 | 第95-98页 |
第四部分 讨论 | 第98-107页 |
1. Na~+/H~+逆向转运蛋白基因和α-thionin基因在提高小麦耐盐和抗白粉病中的作用 | 第98-100页 |
1.1 Na~+/H~+逆向转运蛋白在转基因小麦中的作用机制 | 第98-100页 |
1.2 α-thionin基因对提高小麦白粉病抗性的作用 | 第100页 |
2. 小麦农杆菌转化的影响因素 | 第100-103页 |
2.1 材料的基因型 | 第100-101页 |
2.2 转化材料的类型和状态 | 第101-102页 |
2.3 影响转化的其它因素:菌株类型及浓度、共培养温度和时间 | 第102-103页 |
2.4 筛选方式和筛选剂对效率的影响 | 第103页 |
3. 外源基因的整合位点、拷贝数以及其与表达的关系 | 第103-104页 |
3.1 外源 DNA的整合位点和拷贝数 | 第103-104页 |
3.2 整合位点和表达效率的关系 | 第104页 |
4. 转基因植物分子鉴定的主要问题以及解决办法 | 第104-106页 |
4.1 Southern杂交的难度 | 第104-105页 |
4.2 PCR检测假阳性和非特异性 | 第105页 |
4.3 PCR扩增条带不清晰或无扩增带 | 第105-106页 |
5. 外源基因表达的RT-PCR分析以及需要注意的问题 | 第106-107页 |
参考文献 | 第107-117页 |
在读期间发表的文章、获奖情况和参与的课题 | 第117-118页 |
论文的创新性和不足之处 | 第118页 |
致谢 | 第118-120页 |
学位论文评阅及答辩情祝表 | 第120页 |