| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 1 引言 | 第13-15页 |
| 2 文献综述 | 第15-31页 |
| 2．1 植物开花时间的调控途径 | 第15-20页 |
| 2．1．1 光周期促进途径 | 第15-17页 |
| 2．1．1．1 光照长度 | 第15-16页 |
| 2．1．1．2 昼夜节律生物钟利中心摇摆 | 第16-17页 |
| 2．1．2 春化促进途径 | 第17-18页 |
| 2．1．3 自动调控途径 | 第18页 |
| 2．1．4 赤霉素途径 | 第18-20页 |
| 2．2 植物中花序分生组织属性基因 | 第20-22页 |
| 2．3 花分生组织决定基因 | 第22-25页 |
| 2．3．1 LEAFY基因及其同源基因 | 第22-23页 |
| 2．3．2 APETALAl基因及其同源基因 | 第23-24页 |
| 2．3．3 CAULIFLOWER基因 | 第24-25页 |
| 2．4 花器官分生组织特异基因 | 第25-26页 |
| 2．5 花器官组织特异基因的激活与互作 | 第26-28页 |
| 2．6 裸粒水稻研究进展 | 第28-31页 |
| 2．6．1 形态特征 | 第28-29页 |
| 2．6．2 生理生化特征 | 第29页 |
| 2．6．3 细胞学特征 | 第29页 |
| 2．6．4 遗传分析 | 第29-31页 |
| 3 材料与方法 | 第31-38页 |
| 3．1 材料 | 第31-32页 |
| 3．1．1 植物材料 | 第31页 |
| 3．1．2 引物 | 第31-32页 |
| 3．1．3 菌株、质粒和工具酶 | 第32页 |
| 3．2 试验方法 | 第32-38页 |
| 3．2．1 裸粒水稻小花变异特征观察 | 第32页 |
| 3．2．2 裸粒水稻花器官形态发生观察 | 第32页 |
| 3．2．3 基因定位 | 第32-33页 |
| 3．2．3．1 基因组DNA提取 | 第32-33页 |
| 3．2．3．2 SSR分析 | 第33页 |
| 3．2．4 RT-PCR与测序 | 第33-36页 |
| 3．2．4．1 RNA的提取 | 第33-34页 |
| 3．2．4．2 RNA逆转录 | 第34页 |
| 3．2．4．3 PCR | 第34页 |
| 3．2．4．4 PCR产物回收、克隆和测序 | 第34-35页 |
| 3．2．4．5 实时定量PCR分析 | 第35-36页 |
| 3．2．5 转基因试验 | 第36-38页 |
| 3．2．5．1 转基因质粒的构建 | 第36页 |
| 3．2．5．2 农杆菌EHA105的电转化 | 第36页 |
| 3．5．2．3 农杆菌介导的水稻转化 | 第36-37页 |
| 3．5．2．4 拟南芥浸润法转基因 | 第37-38页 |
| 4 结果与分析 | 第38-61页 |
| 4．1 裸粒水稻花器官的变异特征 | 第38-44页 |
| 4．1．1 裸粒水稻株叶形态、穗部和小花特征 | 第38-39页 |
| 4．1．2 裸粒水稻花器官数目的变异特征 | 第39-42页 |
| 4．1．3 裸粒水稻一次枝梗上小穗花器官平均数目的变异特征 | 第42-43页 |
| 4．1．4 裸粒水稻一次枝梗不同节位的的小花花器官的变异特征 | 第43-44页 |
| 4．2 裸粒水稻颖花分化过程的扫描电镜观察 | 第44-47页 |
| 4．3 裸粒水稻花器官突变的基因定位与克隆 | 第47-48页 |
| 4．3．1 裸粒水稻的遗传分析 | 第47页 |
| 4．3．2 裸粒水稻的基因定位 | 第47-48页 |
| 4．4 裸粒水稻OsMADS1和其它MADS-box基因的表达研究 | 第48-49页 |
| 4．5 水稻OsMADS1的增强表达转基因研究 | 第49-53页 |
| 4．6 水稻OsMADS1干涉转基因研究 | 第53-58页 |
| 4．7 OsMADS1在双子叶植物拟南芥的异域表达研究 | 第58-61页 |
| 5 讨论 | 第61-68页 |
| 5．1 花器官突变体是花发育研究的重要材料 | 第61-62页 |
| 5．2 裸粒水稻花器官突变特征 | 第62-63页 |
| 5．3 裸粒水稻花器官突变的细胞学基础 | 第63页 |
| 5．4 裸粒水稻花器官突变的分子基础 | 第63-65页 |
| 5．5 OsMADS1的表达水平对水稻花器官的影响 | 第65-67页 |
| 5．6 OsMADS1在双子叶植物拟南芥的表达研究 | 第67-68页 |
| 6 参考文献 | 第68-83页 |
| 7 附录：与博士论文研究有关的论文 | 第83页 |
