| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 前言 | 第8-10页 |
| 第一章 人凝血因子V的纯化 | 第10-23页 |
| 1 材料 | 第10-11页 |
| ·血浆 | 第10页 |
| ·实验仪器 | 第10-11页 |
| ·试剂 | 第11页 |
| 2 方法 | 第11-16页 |
| ·试剂配制 | 第11-13页 |
| ·实验方法 | 第13-16页 |
| 3 结果 | 第16-20页 |
| ·纯化的基本条件 | 第16页 |
| ·血浆预处理 | 第16-17页 |
| ·DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析纯化FV | 第17-18页 |
| ·Sephaeryl-S300凝胶过滤层析 | 第18-19页 |
| ·电泳结果 | 第19页 |
| ·FV纯化的各步活性回收率 | 第19-20页 |
| ·FV纯化样品冻存复融后活性检测结果 | 第20页 |
| 4 讨论 | 第20-23页 |
| 第二章 人凝血因子V单克隆抗体细胞株建立 | 第23-38页 |
| 1 材料 | 第23-25页 |
| ·小鼠及骨髓瘤细胞 | 第23页 |
| ·实验仪器 | 第23-24页 |
| ·试剂及耗材 | 第24-25页 |
| 2 方法 | 第25-33页 |
| ·试剂配制 | 第25-27页 |
| ·实验方法 | 第27-33页 |
| 3 结果 | 第33-34页 |
| ·间接ELISA抗原包被量的确定 | 第33页 |
| ·细胞融合效果以及阳性孔率 | 第33页 |
| ·融合细胞生长状况 | 第33页 |
| ·杂交瘤细胞株性质 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-38页 |
| ·免疫动物 | 第34-35页 |
| ·细胞融合 | 第35-37页 |
| ·影响ELISA的因素 | 第37页 |
| ·展望 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 附图 | 第40-42页 |
| 综述 | 第42-52页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |