| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-19页 |
| 前言 | 第19-23页 |
| 参考文献 | 第21-23页 |
| 第一章 重组人骨形态发生蛋白-2壳聚糖纳米微球的制备及体外检测 | 第23-35页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第23-24页 |
| ·实验试剂 | 第23-24页 |
| ·实验仪器 | 第24页 |
| 2 实验方法 | 第24-28页 |
| ·空白壳聚糖纳米微球的制备 | 第24-25页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的制备 | 第25页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的形态和粒径分析 | 第25-26页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球载药量及包封率测定 | 第26-27页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的降解 | 第27页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球体外释放rhBMP-2检测 | 第27-28页 |
| ·壳聚糖纳米微球的溶胀性能检测 | 第28页 |
| ·统计学处理 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-31页 |
| ·微球的形态及粒径分析结果 | 第28-30页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球载药量及包封率测定结果 | 第30页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的降解结果 | 第30-31页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球体外释放rhBMP-2检测结果 | 第31页 |
| ·壳聚糖纳米微球的溶胀性能检测结果 | 第31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 5 参考文献 | 第33-35页 |
| 第二章 重组人骨形态发生蛋白-2壳聚糖纳米微球的体外细胞毒性研究 | 第35-45页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第35-37页 |
| ·实验试剂 | 第35-36页 |
| ·实验仪器 | 第36页 |
| ·实验细胞株 | 第36-37页 |
| 2 实验方法 | 第37-39页 |
| ·空白壳聚糖纳米微球及重组人骨形态发生蛋白-2壳聚糖纳米微球的制备及消毒 | 第37页 |
| ·L929细胞的复苏及传代培养 | 第37-38页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球及空白微球的L929细胞毒实验 | 第38-39页 |
| ·统计学处理 | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-41页 |
| ·L929细胞的复苏及传代培养结果 | 第39-40页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球及空白微球的L929细胞毒实验结果 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 5 参考文献 | 第43-45页 |
| 第三章 重组人骨形态发生蛋白-2壳聚糖纳米微球对大鼠骨髓基质干细胞诱导和分化作用的研究 | 第45-63页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第46-49页 |
| ·实验动物及试剂 | 第46-47页 |
| ·实验仪器 | 第47-48页 |
| ·培养基和溶液 | 第48-49页 |
| 2 实验方法 | 第49-52页 |
| ·改良的骨髓培养法分离培养BMSC | 第49-50页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球对SD大鼠的BMSC诱导及分化作用试验 | 第50-52页 |
| ·统计学处理 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-57页 |
| ·SD大鼠的BMSC的原代及传代培养细胞形态 | 第52-55页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球对SD大鼠的BMSC诱导及分化作用试验结果 | 第55-57页 |
| 4 讨论 | 第57-60页 |
| 5 参考文献 | 第60-63页 |
| 第四章 重组人骨形态发生蛋白-2壳聚糖纳米微球的异位成骨实验研究 | 第63-80页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第63-64页 |
| ·实验试剂 | 第63-64页 |
| ·实验仪器 | 第64页 |
| ·实验动物 | 第64页 |
| 2 实验方法 | 第64-71页 |
| ·空白壳聚糖纳米微球的制备 | 第64-65页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的制备 | 第65页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的异位成骨实验 | 第65-71页 |
| ·统计学处理 | 第71页 |
| 3 结果 | 第71-76页 |
| ·大体观察 | 第71-74页 |
| ·X线检查 | 第74-75页 |
| ·组织切片检查 | 第75-76页 |
| ·植入物标本的ALP活性及钙含量 | 第76页 |
| 4 讨论 | 第76-78页 |
| 5 参考文献 | 第78-80页 |
| 第五章 负载rh-BMP-2壳聚糖纳米微球的CHA人工骨的制备及其在大鼠脊柱融合模型中的成骨活性研究 | 第80-100页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第80-82页 |
| ·实验试剂 | 第80-81页 |
| ·实验仪器 | 第81页 |
| ·实验动物 | 第81-82页 |
| 2 实验方法 | 第82-89页 |
| ·空白壳聚糖纳米微球的制备 | 第82页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球的制备 | 第82页 |
| ·rhBMP-2壳聚糖纳米微球CHA人工骨及rhBMP-2CHA人工骨的制备及消毒 | 第82-83页 |
| ·动物实验模型建立和实验分组 | 第83-88页 |
| ·统计学处理 | 第88-89页 |
| 3 结果 | 第89-94页 |
| ·大体观察 | 第89页 |
| ·Micro-CT检查 | 第89-91页 |
| ·手法触诊检查 | 第91页 |
| ·组织切片检查 | 第91-93页 |
| ·植入物标本的ALP活性及钙含量 | 第93-94页 |
| 4 讨论 | 第94-97页 |
| 5 参考文献 | 第97-100页 |
| 全文小结 | 第100-102页 |
| 成果 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 统计学审稿证明 | 第104-105页 |
