| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 中英文简写索引 | 第8-12页 |
| 第一部分 氯化镉对非洲爪蟾卵母细胞上表达的大鼠 P2X4 受体介导的ATP-激活电流的调制作用 | 第12-34页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 材料和方法 | 第13-20页 |
| 1 实验材料 | 第13-15页 |
| ·实验动物及所需质粒 | 第13页 |
| ·实验药品及试剂盒 | 第13页 |
| ·实验所用液体及配制 | 第13-14页 |
| ·实验仪器 | 第14-15页 |
| 2 方法 | 第15-20页 |
| ·重组质粒的转化和筛选 | 第15-16页 |
| ·碱裂解法小规模提取并纯化质粒DNA | 第16页 |
| ·质粒DNA 的线性化及纯化 | 第16-17页 |
| ·体外转录 | 第17页 |
| ·cRNA 的纯化 | 第17-18页 |
| ·卵母细胞的获取和培养 | 第18-19页 |
| ·cRNA 的微量注射 | 第19页 |
| ·电生理记录-双电极电压钳记录P2X4 受体（通道）电流 | 第19-20页 |
| ·药品的配制及给药方式 | 第20页 |
| ·数据统计分析及拟合 | 第20页 |
| 结果 | 第20-29页 |
| 1 碱裂解法小规模制备得到质粒DNA | 第20-21页 |
| 2 体外转录得到 cRNA | 第21-23页 |
| 3 爪蟾卵母细胞表达的 P2X4 受体介导的 ATP-激活电流 | 第23-29页 |
| ·P2X_4 受体介导的不同浓度的ATP-激活电流 | 第23-24页 |
| ·PPADS、Suramin 对P2X_4 受体介导的I_(ATP) 的影响 | 第24-25页 |
| ·不同浓度的镉对I_(ATP) 的调制作用 | 第25-27页 |
| ·镉对ATP 激活电流量-效曲线的影响 | 第27页 |
| ·不同钳制电位下镉对P2X_4 受体激活电流的影响 | 第27-28页 |
| ·预加镉孵育的时间对镉引起的I_(ATP) 电流的影响 | 第28-29页 |
| 讨论 | 第29-32页 |
| 参考文献 | 第32-34页 |
| 第二部分 卵母细胞对温度变化刺激诱导的电流反应及其机制 | 第34-44页 |
| 前言 | 第34-35页 |
| 材料和方法 | 第35-42页 |
| 1 实验材料 | 第35-36页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·实验用液及配制 | 第35页 |
| ·实验药品 | 第35页 |
| ·实验仪器 | 第35-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-38页 |
| ·爪蟾卵母细胞取材前准备 | 第36页 |
| ·取材 | 第36-37页 |
| ·卵母细胞的分离与去滤泡膜处理 | 第37页 |
| ·电生理记录 | 第37-38页 |
| 3 结果 | 第38-40页 |
| ·低温（0℃）Ringer′s 液冲灌细胞时诱导的膜电流 | 第38-39页 |
| ·高温35℃ Ringer′s 液灌流膜电流的变化 | 第39页 |
| ·钳制电压对温度刺激引起的膜电流的影响 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 综述 | 第44-56页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
