| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-14页 |
| 第一章 亚麻脱胶微生物研究进展 | 第14-27页 |
| ·亚麻生产概况 | 第14页 |
| ·亚麻脱胶原理及过程 | 第14-15页 |
| ·亚麻天然微生物脱胶研究进展 | 第15-16页 |
| ·亚麻脱胶方法研究 | 第16-21页 |
| ·化学脱胶 | 第16页 |
| ·加菌脱胶 | 第16-18页 |
| ·加菌脱胶的原理 | 第17页 |
| ·加菌脱胶研究进展 | 第17-18页 |
| ·酶法脱胶及研究进展 | 第18-20页 |
| ·三种脱胶方法的比较 | 第20-21页 |
| ·环境微生物多样性和研究方法 | 第21-25页 |
| ·环境微生物多样性 | 第21页 |
| ·传统微生物多样性研究方法 | 第21-22页 |
| ·微生物的现代分子生物学研究方法 | 第22-23页 |
| ·变性梯度凝胶电泳技术(DGGE) | 第23-25页 |
| ·变性凝胶梯度电泳原理 | 第23页 |
| ·DGGE技术的基本流程 | 第23-24页 |
| ·PCR-DGGE技术应用现状 | 第24-25页 |
| ·DGGE技术的优越性和局限性 | 第25页 |
| ·本论文研究的目的和意义 | 第25-27页 |
| 第二章 亚麻脱胶动态监测及影响因素测定 | 第27-38页 |
| ·材料与方法 | 第27-29页 |
| ·脱胶方法 | 第27页 |
| ·脱胶过程中相关指标动态测定 | 第27-28页 |
| ·脱胶过程中脱胶液中脱胶酶活性的测定 | 第27-28页 |
| ·脱胶过程中脱胶液中细菌类群与数量测定 | 第28页 |
| ·脱胶过程中脱胶液的成分测定 | 第28页 |
| ·亚麻脱胶影响因素 | 第28-29页 |
| ·温度对亚麻脱胶酶活性的影响 | 第28页 |
| ·水浴比对亚麻脱胶酶活性的影响 | 第28页 |
| ·脱胶助剂对亚麻脱胶酶活性的影响 | 第28页 |
| ·初始pH值对亚麻脱胶酶活性的影响 | 第28-29页 |
| ·结果分析 | 第29-36页 |
| ·亚麻脱胶过程动态测定 | 第29-32页 |
| ·亚麻脱胶过程中微生物数量的变化 | 第29页 |
| ·亚麻脱胶过程中脱胶酶活性的变化 | 第29-30页 |
| ·亚麻脱胶过程中还原糖和总氮量的变化 | 第30-31页 |
| ·脱胶过程中水中pH值和 COD的变化 | 第31-32页 |
| ·影响亚麻脱胶脱胶酶活性的因素 | 第32-36页 |
| ·温度对亚麻脱胶中脱胶酶活性的影响 | 第32-33页 |
| ·水浴比亚麻脱胶中脱胶酶活性的影响 | 第33页 |
| ·脱胶助剂对亚麻脱胶中脱胶酶活性的影响 | 第33-34页 |
| ·pH值对亚麻脱胶中脱胶酶活性的影响 | 第34页 |
| ·各因素正交试验设计 | 第34-36页 |
| ·结论 | 第36-38页 |
| 第三章 亚麻发酵中优势菌的筛选及鉴定 | 第38-46页 |
| ·材料与方法 | 第38-40页 |
| ·筛选方法 | 第38页 |
| ·筛选培养基 | 第38-39页 |
| ·初筛 | 第38-39页 |
| ·复筛 | 第39页 |
| ·菌种的鉴定 | 第39-40页 |
| ·菌落和菌体形态观察 | 第39页 |
| ·16S rDNA序列分析鉴定 | 第39-40页 |
| ·细菌 DNA的提取 | 第39页 |
| ·16S rDNA的 PCR反应体系和程序 | 第39页 |
| ·DNA序列测定和分析 | 第39-40页 |
| ·生理生化鉴定 | 第40页 |
| ·摇瓶脱胶试验 | 第40页 |
| ·试验结果与讨论 | 第40-45页 |
| ·筛选结果 | 第40页 |
| ·四株脱胶菌基本特征 | 第40-43页 |
| ·16S rDNA的序列测定和分析 | 第43-44页 |
| ·细菌 DNA提取和 PCR结果 | 第43页 |
| ·16S rDNA序列测定和分析 | 第43页 |
| ·构建系统发育树 | 第43-44页 |
| ·加菌脱胶 | 第44-45页 |
| ·加菌脱胶感观观测 | 第44页 |
| ·加菌脱胶脱胶液中相关酶活性测定表 | 第44页 |
| ·加菌脱胶脱胶液中其他参数的测定 | 第44-45页 |
| ·结论 | 第45-46页 |
| 第四章 果胶酶酶活性的影响因素测定 | 第46-53页 |
| ·材料与方法 | 第46-47页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-47页 |
| ·四株菌生长曲线测定 | 第46页 |
| ·四株菌的产酶曲线 | 第46页 |
| ·温度对脱胶菌产酶活性的影响 | 第46-47页 |
| ·pH值对果胶酶活性的影响 | 第47页 |
| ·碳源对果胶酶活性影响 | 第47页 |
| ·氮源对果胶酶活性影响 | 第47页 |
| ·金属离子对果胶酶活性的影响 | 第47页 |
| ·结果与分析 | 第47-52页 |
| ·四株菌生长曲线 | 第47-48页 |
| ·四株菌的产酶曲线 | 第48-49页 |
| ·温度对果胶酶活性的影响 | 第49-50页 |
| ·pH值对果胶酶活性的影响 | 第50页 |
| ·不同碳源对果胶酶活性的影响 | 第50-51页 |
| ·不同氮源对果胶酶活性的影响 | 第51页 |
| ·不同重金属离子对四株菌果胶酶活性的影响 | 第51-52页 |
| ·结论 | 第52-53页 |
| 第五章 亚麻脱胶液中的微生物多样性 | 第53-57页 |
| ·材料与方法 | 第53-55页 |
| ·亚麻发酵 | 第53页 |
| ·不同处理的亚麻发酵 | 第53页 |
| ·沤麻液中 DNA的提取 | 第53-54页 |
| ·亚麻液细菌16S rDNA V3区扩增 | 第54-55页 |
| ·引物 | 第54页 |
| ·16S rDNA V3扩增体系 | 第54页 |
| ·16S rDNA V3区扩增程序 | 第54页 |
| ·PCR产物的变性梯度凝胶电泳(DGGE)分析 | 第54-55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-56页 |
| ·亚麻发酵液中细菌微生物多样性的动态变化 | 第55-56页 |
| ·亚麻发酵液中细菌总 DNA提取结果 | 第55页 |
| ·亚麻发酵液中细菌总 DNA V3区扩增结果 | 第55页 |
| ·发酵液中细菌总 DNA的 PCR-DGGE电泳分析 | 第55-56页 |
| ·不同处理亚麻发酵中细菌微生物多样性的变化 | 第56页 |
| ·不同处理亚麻发酵液中细菌总 DNA的提取结果 | 第56页 |
| ·不同处理的亚麻发酵液中细菌总 DNA的 V3区扩增结果 | 第56页 |
| ·不同处理间亚麻发酵液中细菌总 DNA的 DGGE电泳分析 | 第56页 |
| ·讨论 | 第56-57页 |
| 第六章 结果与讨论 | 第57-59页 |
| ·结果 | 第57-58页 |
| ·讨论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 附录 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第67页 |
