| 致谢 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第16-31页 |
| 1.1 研究背景 | 第16-18页 |
| 1.2 植物根际促生菌(PGPR) | 第18页 |
| 1.3 IAA产生菌 | 第18-23页 |
| 1.3.1 IAA产生菌概述 | 第18-20页 |
| 1.3.2 IAA产生菌合成IAA的主要路径 | 第20-22页 |
| 1.3.3 IAA产生菌合成IAA的主要路径功能基因设计概况 | 第22-23页 |
| 1.4 生物质炭-IAA产生菌菌剂 | 第23-29页 |
| 1.4.1 生物质炭概述 | 第23-28页 |
| 1.4.2 生物质炭对微生物的影响 | 第28页 |
| 1.4.3 IAA产生菌-生物质炭菌剂概述 | 第28-29页 |
| 1.5 研究目的、意义及技术路线 | 第29-31页 |
| 1.5.1 研究目的和意义 | 第29-30页 |
| 1.5.2 技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 IAA产生菌相关功能基因引物的设计 | 第31-45页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 材料与方法 | 第32-35页 |
| 2.2.1 引物设计逻辑网络图 | 第32-33页 |
| 2.2.2 功能基因原始序列的收集 | 第33页 |
| 2.2.3 高保守区比对 | 第33-34页 |
| 2.2.4 克隆测序 | 第34-35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-44页 |
| 2.3.1 同一属水平(Pesudomous假单胞菌属)iaaM基因引物设计结果 | 第35-41页 |
| 2.3.2 纯菌(Bacillus Subtilis 168) bioA基因引物设计结果 | 第41-44页 |
| 2.4 小结 | 第44-45页 |
| 第三章 不同种类生物质炭对Bacillus Subtilis 168生长及IAA产量的影响 | 第45-61页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 材料与方法 | 第46-51页 |
| 3.2.1 生物质炭的制备 | 第46页 |
| 3.2.2 Bacillus Subtilis 168菌悬液制备与保存方法 | 第46页 |
| 3.2.3 生物质炭-Bacillus Subtilis 168菌剂的制备 | 第46-47页 |
| 3.2.4 实验设计与样品采集 | 第47-48页 |
| 3.2.5 DNA提取及实时荧光定量PCR | 第48页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR与16S V4区高通量测序 | 第48-50页 |
| 3.2.7 IAA含量及生物质炭理化性质的测定 | 第50页 |
| 3.2.8 电镜扫描(Screen Microscope Electron,SME)样品制备 | 第50页 |
| 3.2.9 统计分析 | 第50-51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 3.3.1 不同种类生物质炭基本理化性质 | 第51-53页 |
| 3.3.2 生物质炭-Bacillus Subtilis 168菌剂电镜扫描图像 | 第53-54页 |
| 3.3.3 不同种类生物质炭对Bacillus Subtilis 168生长的影响 | 第54-60页 |
| 3.4 小结 | 第60-61页 |
| 第四章 青竹生物质炭-Bacillus Subtilis 168菌剂对水稻苗期生长的影响 | 第61-67页 |
| 4.1 引言 | 第61-62页 |
| 4.2 材料方法 | 第62-63页 |
| 4.2.1 供试土壤及植株 | 第62页 |
| 4.2.2 主要试剂和仪器 | 第62页 |
| 4.2.3 菌剂的制备 | 第62页 |
| 4.2.4 实验设计与样品采集 | 第62-63页 |
| 4.2.5 水稻生物量的测定 | 第63页 |
| 4.2.6 土壤中IAA的提取与测定 | 第63页 |
| 4.2.7 统计分析 | 第63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-66页 |
| 4.3.1 土壤中IAA产量的变化趋势 | 第63-64页 |
| 4.3.2 菌剂对水稻生物量的影响 | 第64-66页 |
| 4.4 小结 | 第66-67页 |
| 第五章 总结与展望 | 第67-69页 |
| 5.1 主要结论 | 第67页 |
| 5.2 存在的问题与展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-80页 |
| 作者简介 | 第80页 |
