| 摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第17-63页 |
| 1.1 细胞表面唾液酸研究简介 | 第17-30页 |
| 1.1.1 细胞表面唾液酸的介绍 | 第17-21页 |
| 1.1.2 唾液酸代谢与癌症病变的研究 | 第21-25页 |
| 1.1.3 唾液酸特异性识别与标记方法 | 第25-28页 |
| 1.1.4 细胞表面唾液酸的检测技术 | 第28-30页 |
| 1.2 表面增强拉曼光谱用于细胞表面唾液酸的研究 | 第30-39页 |
| 1.2.1 表面增强拉曼光谱简介 | 第30-31页 |
| 1.2.2 表面增强拉曼光谱在生物体系研究的优势 | 第31-32页 |
| 1.2.3 表面增强拉曼光谱技术在细胞体系的研究方法 | 第32-34页 |
| 1.2.4 表面增强拉曼光谱应用于细胞表面唾液酸的研究 | 第34-39页 |
| 1.3 本部分的研究思路与主要内容 | 第39-40页 |
| 1.4 细菌耐药性机制的研究 | 第40-50页 |
| 1.4.1 浮游细菌耐药性机制 | 第41-44页 |
| 1.4.2 滞留菌与生物被膜的形成及其耐药机制 | 第44-50页 |
| 1.5 耐药性细菌的治疗策略 | 第50-61页 |
| 1.5.1 浮游耐药性菌的治疗方法 | 第50-51页 |
| 1.5.2 滞留菌与生物被膜治疗策略 | 第51-55页 |
| 1.5.3 耐药性细菌治疗的新策略 | 第55-61页 |
| 1.6 本部分的研究思路与主要内容 | 第61-63页 |
| 第二章 表面增强拉曼光谱结合苯硼酸分子识别传感器用于癌细胞表面唾液酸的动态表达研究 | 第63-87页 |
| 2.1 引言 | 第63-66页 |
| 2.2 实验方法 | 第66-69页 |
| 2.2.1 AgNP@MPBA纳米传感器的制备与表征 | 第66页 |
| 2.2.2 苯硼酸与唾液酸的相互作用的探究 | 第66-67页 |
| 2.2.3 细胞培养及其与纳米探针的孵育 | 第67-68页 |
| 2.2.4 细胞毒性测试 | 第68页 |
| 2.2.5 暗场成像研究AgNP@MPBA纳米探针与唾液酸的结合 | 第68-69页 |
| 2.2.6 唾液酸酶与逆转录酶抑制剂作用细胞 | 第69页 |
| 2.2.7 SERS光谱检测 | 第69页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第69-85页 |
| 2.3.1 SERS纳米探针的制备与表征 | 第69-71页 |
| 2.3.2 AgNP@MPBA纳米探针与唾液酸的识别作用 | 第71-74页 |
| 2.3.3 细胞毒性评估 | 第74-75页 |
| 2.3.4 AgNP@MPBA纳米探针与细胞培养时间探究 | 第75-76页 |
| 2.3.5 癌细胞表面唾液酸的研究 | 第76-80页 |
| 2.3.6 原位追踪唾液酸表达水平对唾液酸酶的响应 | 第80-83页 |
| 2.3.7 原位追踪唾液酸表达水平对AZT的响应 | 第83-85页 |
| 2.4 本章小结 | 第85-87页 |
| 第三章 表面增强拉曼光谱用于乳腺癌组织唾液酸的研究 | 第87-99页 |
| 3.1 引言 | 第87-89页 |
| 3.2 实验方法 | 第89-90页 |
| 3.2.1 乳腺癌组织样品的制备 | 第89页 |
| 3.2.2 SERS光谱和暗场成像用于细胞及乳腺癌组织表面唾液酸的评估 | 第89-90页 |
| 3.2.3 SERS光谱收集与分析 | 第90页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第90-97页 |
| 3.3.1 SERS光谱用于细胞表面唾液酸的研究 | 第90-93页 |
| 3.3.2 SERS光谱用于乳腺组织唾液酸的研究 | 第93-95页 |
| 3.3.3 ROC曲线对乳腺组织表面唾液酸表达分析 | 第95-96页 |
| 3.3.4 共聚焦拉曼成像研究乳腺癌组织表面唾液酸表达 | 第96-97页 |
| 3.4 本章小结 | 第97-99页 |
| 第四章 基于Staphyloxanthin的光分解作用治疗多重耐药性的金黄色葡萄球菌 | 第99-119页 |
| 4.1 引言 | 第99-101页 |
| 4.2 实验方法 | 第101-105页 |
| 4.2.1 460 nm蓝光LED装置 | 第101页 |
| 4.2.2 STX色素的提取与检测 | 第101-102页 |
| 4.2.3 细胞膜流动性的检测 | 第102页 |
| 4.2.4 荧光成像对细胞膜渗透性的研究 | 第102-103页 |
| 4.2.5 最低抑菌浓度与最低杀菌浓度的测定 | 第103页 |
| 4.2.6 Daptomycin-biodipy的合成 | 第103页 |
| 4.2.7 超分辨荧光显微镜研究Daptomycin在细胞膜的分布 | 第103-104页 |
| 4.2.8 光结合膜靶向抗生素治疗MRSA | 第104页 |
| 4.2.9 协同抗菌效应分析 | 第104页 |
| 4.2.10 统计分析 | 第104-105页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第105-117页 |
| 4.3.1 460 nm蓝光对STX色素的光分解作用 | 第105-106页 |
| 4.3.2 460 nm光对细胞膜性质的影响 | 第106-108页 |
| 4.3.3 光结合膜靶向抗生素作用于细胞膜的研究 | 第108-111页 |
| 4.3.4 光协助增强Daptomycin治疗MRSA方法的探究 | 第111-113页 |
| 4.3.5 460 nm光与Daptomycin对MRSA的协同治疗作用 | 第113-115页 |
| 4.3.6 460 nm光与Daptomycin对多种耐药性金黄色葡萄球菌的治疗作用探究 | 第115-116页 |
| 4.3.7 光与其他膜靶向的抗生素对MRSA作用 | 第116-117页 |
| 4.4 本章小结 | 第117-119页 |
| 第五章 光增强膜靶向的抗生素对MRSA滞留菌的治疗 | 第119-139页 |
| 5.1 引言 | 第119-122页 |
| 5.2 实验部分 | 第122-126页 |
| 5.2.1 细菌生长曲线的研究 | 第122-123页 |
| 5.2.2 稳定期MRSA的治疗研究 | 第123页 |
| 5.2.3 滞留菌模型的建立与研究 | 第123页 |
| 5.2.4 利用460nm光增强Daptomycin治疗生物被膜 | 第123-124页 |
| 5.2.5 460 nm光协助Daptomycin治疗血液中的MRSA | 第124-125页 |
| 5.2.6 细胞毒性测试 | 第125页 |
| 5.2.7 460 nm光协助Daptomycin用于MRSA感染的小鼠伤口模型研究 | 第125-126页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第126-137页 |
| 5.3.1 MRSA生长曲线的探究 | 第126-127页 |
| 5.3.2 460 nm光与Daptomycin对稳定期MRSA的治疗探究 | 第127-128页 |
| 5.3.3 460 nm光协助Daptomycin治疗MRSA滞留菌 | 第128-130页 |
| 5.3.4 460 nm光增强Daptomycin作用于MRSA生物被膜 | 第130-133页 |
| 5.3.5 460 nm光与Daptomycin对人血液中MRSA感染的治疗研究 | 第133-134页 |
| 5.3.6 细胞毒性研究 | 第134-135页 |
| 5.3.7 460 nm光协助Daptomycin用于治疗MRSA感染的小鼠伤口模型 | 第135-137页 |
| 5.4 本章小结 | 第137-139页 |
| 第六章 总结与展望 | 第139-143页 |
| 参考文献 | 第143-183页 |
| 作者简介及攻读学位期间研究成果 | 第183-187页 |
| 致谢 | 第187-188页 |
