| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 本文缩写词(Abbreviation) | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 猕猴桃果实熟腐病的研究进展 | 第10-12页 |
| 1.1.1 猕猴桃果实熟腐病的分布 | 第10页 |
| 1.1.2 猕猴桃果实熟腐病的病原种类 | 第10-11页 |
| 1.1.3 猕猴桃果实熟腐病的病害循环 | 第11页 |
| 1.1.4 猕猴桃果实熟腐病的防治 | 第11-12页 |
| 1.2 植物抗病性研究进展 | 第12-16页 |
| 1.2.1 植物抗病性概述 | 第12页 |
| 1.2.2 真菌-植物之间的抗病机理研究 | 第12-13页 |
| 1.2.3 细菌-植物之间的抗病机理研究 | 第13-14页 |
| 1.2.4 病毒-植物之间的抗病机理研究 | 第14-15页 |
| 1.2.5 其他抗病机理研究 | 第15-16页 |
| 1.3 XTH研究进展 | 第16-19页 |
| 1.3.1 XTH的结构和功能 | 第16-17页 |
| 1.3.2 XTH与植物受到非生物胁迫的关系 | 第17页 |
| 1.3.3 XTH与植物受到生物胁迫的关系 | 第17-19页 |
| 1.4 本论文的立题背景及研究意义 | 第19-22页 |
| 1.4.1 本论文课题来源 | 第19页 |
| 1.4.2 本论文的立题背景及研究意义 | 第19-20页 |
| 1.4.3 本论文研究的主要内容 | 第20-21页 |
| 1.4.4 本论文的研究路线 | 第21-22页 |
| 第二章 基于RNA-Seq对猕猴桃XTH基因的筛选 | 第22-28页 |
| 2.1 材料及方法 | 第22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-26页 |
| 2.2.1 不同品种猕猴桃XTH基因的分布情况 | 第22-25页 |
| 2.2.1.1 “金艳”XTH基因的变化情况 | 第22-23页 |
| 2.2.1.2 “红阳”XTH基因的变化情况 | 第23-25页 |
| 2.2.1.3 “金艳”和“红阳”XTH基因的变化汇总 | 第25页 |
| 2.2.2 “金艳”和“红阳”XTH基因的聚类分析 | 第25-26页 |
| 2.3 结论与讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 “金艳”猕猴桃XTH5、XTH7和XTH14基因的克隆 | 第28-35页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-31页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.1.1.1 果实材料 | 第28页 |
| 3.1.1.2 实验试剂及器材 | 第28页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第28-31页 |
| 3.1.2.1 猕猴桃果实总RNA提取 | 第28-29页 |
| 3.1.2.2 反转录合成cDNA第一链 | 第29页 |
| 3.1.2.3 利用RT-PCR技术扩增XTH基因 | 第29-30页 |
| 3.1.2.4 割胶回收 | 第30-31页 |
| 3.1.2.5 载体连接克隆 | 第31页 |
| 3.1.2.6 PCR产物测序与序列分析 | 第31页 |
| 3.2 结果与分析 | 第31-34页 |
| 3.2.1 RNA质量鉴定 | 第31-32页 |
| 3.2.2 RT-PCR结果验证 | 第32-33页 |
| 3.2.3 “金艳”XTH5、XTH7和XTH14基因载体连接克隆结果 | 第33页 |
| 3.2.4 “金艳”XTH5、XTH7和XTH14基因比对结果 | 第33-34页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第34-35页 |
| 第四章 猕猴桃XTH5、XTH7和XTH14基因的生物信息学分析 | 第35-45页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第35页 |
| 4.1.2.1 系统发育树构建方法 | 第35页 |
| 4.1.2.2 蛋白质结构分析方法 | 第35页 |
| 4.2 结果与分析 | 第35-44页 |
| 4.2.1 系统发育树构建 | 第35-37页 |
| 4.2.2 蛋白质结构分析 | 第37-44页 |
| 4.2.2.1 氨基酸序列理化性质分析 | 第37-38页 |
| 4.2.2.2 XTH信号肽分析 | 第38-40页 |
| 4.2.2.3 XTH跨膜结构分析 | 第40-41页 |
| 4.2.2.4 XTH蛋白质二级预测 | 第41-43页 |
| 4.2.2.5 XTH蛋白质三级预测 | 第43-44页 |
| 4.3 结论与讨论 | 第44-45页 |
| 第五章 猕猴桃XTH5、XTH7和XTH14基因表达分析 | 第45-50页 |
| 5.1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第45页 |
| 5.1.1.1 供试材料 | 第45页 |
| 5.1.1.2 主要仪器及试剂 | 第45页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 5.1.2.1 猕猴桃果实RNA提取 | 第45页 |
| 5.1.2.2 反转录cDNA第一链的合成 | 第45页 |
| 5.1.2.3 引物设计与筛选 | 第45页 |
| 5.1.2.4 实时荧光定量PCR | 第45-46页 |
| 5.2 结果与分析 | 第46-49页 |
| 5.2.1 XTH5、XTH7和XTH14基因的qPCR曲线 | 第46-47页 |
| 5.2.1.1 “金艳”和“红阳”XTH5基因表达情况 | 第46页 |
| 5.2.1.2 “金艳”和“红阳”XTH7基因表达情况 | 第46-47页 |
| 5.2.1.3 “金艳”和“红阳”XTH14基因表达情况 | 第47页 |
| 5.2.2 接种天数与相关XTH基因表达量的相关性分析 | 第47-49页 |
| 5.3 结论与讨论 | 第49-50页 |
| 第六章 研究总结与展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59页 |
